药智官方微信 药智官方微博
客服 反馈
  • 类器官与pdx模型
  • 斑马鱼基因编辑

企业名片

杭州环特生物科技股份有限公司

  • 联系人:成经理 在线客服
  • 联系方式:立即查看
  • 地址:江陵路88号万轮科技园5幢2楼A区
  • 该商家已通过实名认证

搜索:CRO服务

【评价原理】炎症是免疫系统对组织损伤和感染的一种反应,主要特点就是白细胞(粒细胞、巨噬细胞)会聚集在感染组织周围。斑马鱼的免疫系统非常类似于哺乳动物。创伤发生时,中性粒细胞、巨噬细胞对创伤性炎症几乎同时作出应答,中性粒细胞迁移速度快,先募集到损伤部位,随后巨噬细胞才到达。数小时后,炎症开始消退,巨噬细胞和中性粒细胞离开损伤部位。用手术刀截断斑马鱼尾鳍,诱发急性损伤,促使斑马鱼中性粒细胞发生免疫应答。采用转基因中性粒细胞荧光鱼(呈绿色),可在荧光显微镜在观察到尾鳍截断的斑马鱼创面中性粒细胞数量比正常斑马鱼明显增加。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成三组,分别是正常对照组、模型对照组和服用抗炎药组。其中正常对照组未截断尾鳍,模型对照组和服用抗炎药组均截断尾鳍。服用抗炎药组在切断尾鳍后摄入吲哚美辛、阿司匹林、布洛芬、双氯芬酸之类的抗炎药。服用一段时间抗炎药后,我们观察斑马鱼尾鳍中性粒细胞数量,并通过Q-PCR检测TNF-α、COX-2、IL-1β、IL-6和IL-10炎症相关因子的表达。【结果展示】图1. 斑马鱼尾鳍炎症中性粒细胞表型图黄色虚线区域为尾鳍,绿色颗粒为中性粒细胞可以看到,服用/注射抗炎药组尾鳍中性粒细胞与正常对照组相似,未出现创面中性粒细胞募集情况。以TNF-α、COX-2基因为例,提供柱状图。图2. 斑马鱼TNF-α基因相对表达量与模型对照组比较,**p < 0.01可以看到,服用/注射抗炎药组斑马鱼与模型对照组比较,TNF-α基因表达明显下调。图3. 斑马鱼COX-2基因相对表达量与模型对照组比较,***p < 0.001可以看到,服用/注射抗炎药组斑马鱼与模型对照组比较,COX-2基因表达明显下调。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用/注射抗炎药组尾鳍中性粒细胞数量与正常对照组相似,未出现创面中性粒细胞募集情况,且TNF-α、COX-2、IL-1β、IL-6和IL-10炎症因子明显下调。2.本实验证实了吲哚美辛、阿司匹林、布洛芬、双氯芬酸具有显著的抗炎作用,且抑制TNF-α、COX-2、IL-1β、IL-6和IL-10炎症相关因子的表达。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】炎症是免疫系统对组织损伤和感染的一种反应,主要特点就是白细胞(粒细胞、巨噬细胞)会聚集在感染组织周围。斑马鱼的免疫系统非常类似于哺乳动物。创伤发生时,中性粒细胞、巨噬细胞对创伤性炎症几乎同时作出应答,中性粒细胞迁移速度快,先募集到损伤部位处,随后巨噬细胞才到达。数小时后,炎症开始消退,巨噬细胞和中性粒细胞离开损伤部位。内毒素(LPS)是革兰氏阴性菌细胞壁的组成成分,我们将其注射到斑马鱼卵黄囊,诱导炎症介质的产生。斑马鱼的中性粒细胞发生免疫应答,聚集在卵黄囊。采用转基因中性粒细胞荧光鱼(呈绿色),可在荧光显微镜在观察到斑马鱼卵黄囊的中性粒细胞比正常斑马鱼明显增多。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成三组,分别是正常对照组、模型对照组和服用抗炎组。其中正常对照组未注射LPS,模型对照组和抗炎组均注射LPS(LPS通过注射到卵黄囊的方式摄入到斑马鱼体内)。抗炎药组在注射LPS之前摄入吲哚美辛、阿司匹林、布洛芬和双氯芬酸之类的抗炎药。服用一段时间抗炎药后,我们观察斑马鱼卵黄囊内中性粒细胞数量,并通过Q-PCR检测TNF-α、COX-2、IL-1β、IL-6和IL-10炎症相关因子的表达。【结果展示】图1. 斑马鱼卵黄囊内中性粒细胞表型图黄色虚线区域为卵黄囊,绿色颗粒为中性粒细胞可以看到,服用/注射抗炎药组卵黄囊内中性粒细胞比模型对照组明显,未出现中性粒细胞大量募集情况。以IL-6、IL-10基因为例,提供柱状图。图2. 斑马鱼IL-6基因相对表达量与模型对照组比较,**p < 0.01可以看到,服用/注射抗炎药组斑马鱼与模型对照组比较,IL-6基因表达明显下调。图3. 斑马鱼IL-10基因相对表达量与模型对照组比较,***p < 0.001可以看到,服用/注射抗炎药组斑马鱼与模型对照组比较,IL-10基因表达明显下调。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用/注射抗炎药组卵黄囊内中性粒细胞数量比正常对照组略多,未出现模型对照组中性粒细胞募集情况,且TNF-α、COX-2、IL-1β、IL-6和IL-10炎症因子明显下调。2.本实验证实了吲哚美辛、阿司匹林、布洛芬和双氯芬酸具有显著的抗炎作用,且抑制TNF-α、COX-2、IL-1β、IL-6和IL-10炎症相关因子的表达。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】炎症是免疫系统对组织损伤和感染的一种反应,主要特点就是白细胞(粒细胞、巨噬细胞)会聚集在感染组织周围。斑马鱼的免疫系统非常类似于哺乳动物。创伤发生时,中性粒细胞、巨噬细胞对创伤性炎症几乎同时作出应答,中性粒细胞迁移速度快,先募集到损伤部位,随后巨噬细胞才到达。数小时后,炎症开始消退,巨噬细胞和中性粒细胞离开损伤部位。硫酸铜损伤斑马鱼神经丘(斑马鱼体表侧线器的末稍器官),造成神经丘细胞死亡,斑鱼的中性粒细胞发生免疫应答,聚集在神经丘周围,吞噬死亡的细胞 。采用转基因中性粒细胞荧光鱼(呈绿色),可在荧光显微镜在观察到斑马鱼体表侧线上的中性粒细胞比正常斑马鱼明显增多。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成三组,分别是正常对照组、模型对照组和服用抗炎药组。其中正常对照组未摄入硫酸铜,模型对照组和服用/注射抗炎药组均摄入硫酸铜(硫酸铜通过溶解到养鱼用水中的方式摄入到斑马鱼体内)。服用/注射抗炎药组在摄入硫酸铜之前摄入吲哚美辛、阿司匹林、布洛芬和双氯芬酸之类的抗炎药。服用一段时间抗炎药后,我们观察斑马鱼体表侧线上的中性粒细胞数量,并通过Q-PCR检测TNF-α、COX-2、IL-1β、IL-6和IL-10炎症相关因子的表达。【结果展示】图1. 斑马鱼体表侧线上中性粒细胞表型图黄色箭头所指为中性粒细胞可以看到,服用/注射抗炎药组侧线上中性粒细胞与正常对照组相似,未出现中性粒细胞募集情况。以IL-1β基因为例,提供柱状图。图2. 斑马鱼IL-1β基因相对表达量与模型对照组比较,**p < 0.01可以看到,服用/注射抗炎药组斑马鱼与模型对照组比较,IL-1β基因表达明显下调。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用抗炎药组侧线上中性粒细胞数量与正常对照组数量相当,未出现模型对照组中性粒细胞募集情况,且TNF-α、COX-2、IL-1β、IL-6和IL-10炎症因子明显下调。2.本实验证实了吲哚美辛、阿司匹林、布洛芬和双氯芬酸具有显著的抗炎作用,且抑制TNF-α、COX-2、IL-1β、IL-6和IL-10炎症相关因子的表达。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】随着电子产品的广泛使用,用眼的时间和强度已远超过去,用眼过度引起一系列视力问题。研究表明,高度近视、视网膜疾病、白内障、眼干燥关节综合征均与眼细胞凋亡相关。斑马鱼的眼部血管结构跟人非常相似,斑马鱼视网膜结构也跟人高度相似。用霉酚酸吗啉乙酯可以诱发斑马鱼眼细胞凋亡,模拟人的眼部疾病。用特异性荧光染色(呈绿色),患有眼疾的斑马鱼眼细胞凋亡较正常斑马鱼明显增多,在荧光显微镜下可以观察到。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成三组,分别是正常对照组、模型对照组和药物组。其中正常对照组未摄入霉酚酸吗啉乙酯,模型对照组与服用眼保护剂组都摄入了等量的霉酚酸吗啉乙酯(霉酚酸吗啉乙酯通过溶解到养鱼用水中的方式摄入到斑马鱼体内)。眼保护剂组在摄入霉酚酸吗啉乙酯的同时摄入蓝莓叶黄素酯之类的眼保护剂。服用一段时间眼保护剂后,我们对斑马鱼整体做凋亡细胞特异性染色,观察细胞凋亡,同时制作成病理切片观察眼部的病理结构变化。【结果展示】图1. 斑马鱼眼细胞凋亡表型图黄色虚线区域为眼,绿色小点为凋亡细胞可以看到,模型对照组的凋亡细胞较正常对照组明显增多,而眼保护剂组凋亡细胞与正常细胞相似。图2. 眼部凋亡细胞病理切片红色箭头指向凋亡细胞从病理切片中也能看出来,模型对照组出现较多的凋亡细胞,表现为细胞固缩、染色质边集,而眼保护剂组细胞和正常斑马鱼中形态相似。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,眼保护剂组斑马鱼眼细胞与正常对照组相似,并未出现模型对照组的大面积细胞凋亡情况。2.本实验证实了蓝莓叶黄素酯具有保护视力功效。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】近年来,随着工业化的发展,空气污染越来越严重,雾霾天也越来越多,对人的侵害也越来越严重。二氧化硫、氮氧化物、可吸入颗粒物(PM10)和细颗粒物(PM2.5)是雾霾的主要组成成分。研究表明,进入斑马鱼和大鼠体内的纳米活性炭颗粒能通过肠道的杯状细胞分泌而排泄,这一新颖的纳米排泄途径被命名为肠杯状细胞分泌通路(IGCSP)。用红色荧光微球模拟PM2.5微粒,激活斑马鱼炎症机制,引起其体内吞噬细胞的吞噬作用肠道分泌得以将异物排除。根据体内荧光微球的数量(呈红色),抗雾霾剂组斑马鱼体内微球数量明显减少。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成两组,分别是模型对照组和抗雾霾剂组。其中模型对照组与服用抗雾霾剂组都给予了等量的荧光微球(荧光微球通过注射方式到斑马鱼体内)。抗雾霾剂组在注射荧光微球的同时摄入冬虫夏草之类的抗雾霾剂。服用一段时间抗雾霾剂后,我们在荧光显微镜下观察斑马鱼体内荧光微球数量的变化来反映机体清除PM2.5的能力。【结果展示】图1. 斑马鱼抗雾霾表型图红色点为荧光微球可以看到,服用抗雾霾剂组的荧光微球数量与模型对照组比较明显减少。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用抗雾霾剂组的荧光微球数量与模型对照组比较明显减少。2.本实验证实了冬虫夏草具有抗雾霾功效。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】静脉注射给予长春瑞滨造模斑马鱼免疫力低下模型。大剂量长春瑞滨骨髓抑制明显,导致血小板、红细胞及白细胞数目(中性粒细胞、巨噬细胞、T细胞等)减少和贫血,最终导致免疫力低下。人类与斑马鱼在免疫系统的细胞组成上极为相似,而且斑马鱼是目前所有同时具有特异性免疫和非特异性免疫动物个体中体积最小的,适合高通量评价调节免疫功效。斑马鱼静脉注射大剂量长春瑞滨后可造成免疫低下。采用转基因巨噬细胞绿色荧光斑马鱼,可在荧光显微镜在观察到免疫力低下的斑马鱼体内的巨噬细胞荧光强度明显减弱。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成三组,分别是正常对照组、模型对照组和服用免疫调节剂组。其中正常对照组未注射长春瑞滨,模型对照组与服用免疫调节剂组都注射了等量的长春瑞滨(长春瑞滨通过静脉注射的方式摄入到斑马鱼体内)。服用免疫调节剂组在注射长春瑞滨后摄入盐酸小檗胺等免疫调节剂。服用一段时间免疫调节剂后,我们观察巨噬细胞荧光强度变化。【结果展示】图1. 斑马鱼巨噬细胞表型图绿色荧光颗粒代表巨噬细胞可以看到,免疫调节剂组巨噬细胞荧光强度与正常对照组相似,没有出现巨噬细胞荧光强度明显减弱的情况。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,免疫调节剂组巨噬细胞数量与正常对照组相似,并未出现模型对照组免疫力低下的情况。2.本实验证实了盐酸小檗胺具有增强免疫力的功效。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】静脉注射给予长春瑞滨造模斑马鱼免疫力低下模型。大剂量长春瑞滨骨髓抑制明显,导致血小板、红细胞及白细胞数目(中性粒细胞、巨噬细胞、T细胞等)减少和贫血,最终导致免疫力低下人类与斑马鱼在免疫系统的细胞组成上极为相似,而且斑马鱼是目前所有同时具有特异性免疫和非特异性免疫动物个体中体积最小的,适合高通量评价调节免疫功效。斑马鱼静脉注射大剂量长春瑞滨后可造成免疫低下。采用转基因中性粒细胞绿色荧光斑马鱼,可在荧光显微镜在观察到免疫力低下的斑马鱼体内的中性粒细胞荧光强度明显减弱。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成三组,分别是正常对照组、模型对照组和服用免疫调节剂组。其中正常对照组未注射长春瑞滨,模型对照组与服用免疫调节剂组都注射了等量的长春瑞滨(长春瑞滨通过静脉注射的方式摄入到斑马鱼体内)。服用免疫调节剂组在注射长春瑞滨后摄入盐酸小檗胺等免疫调节剂。服用一段时间免疫调节剂后,我们观察中性粒细胞荧光强度变化。【结果展示】图1. 斑马鱼中性粒细胞表型图绿色荧光颗粒代表中性粒细胞可以看到,免疫调节剂组中性粒细胞荧光强度与正常对照组相似,没有出现中性粒细胞荧光强度明显减弱的情况。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,免疫调节剂组中性粒细胞数量与正常对照组相似,并未出现模型对照组免疫力低下的情况。2.本实验证实了盐酸小檗胺具有增强免疫力的功效。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】静脉注射给予长春瑞滨造模斑马鱼免疫力低下模型。大剂量长春瑞滨骨髓抑制明显,导致血小板、红细胞及白细胞数目(中性粒细胞、巨噬细胞、T细胞等)减少和贫血,最终导致免疫力低下。人类与斑马鱼在免疫系统的细胞组成上极为相似,而且斑马鱼是目前所有同时具有特异性免疫和非特异性免疫动物个体中体积最小的,适合高通量评价调节免疫功效。斑马鱼静脉注射大剂量长春瑞滨后可造成免疫低下。采用转基因T细胞红色荧光斑马鱼,可在荧光显微镜在观察到免疫力低下的斑马鱼体内的T细胞荧光强度明显减弱。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成三组,分别是正常对照组、模型对照组和服用免疫调节剂组。其中正常对照组未注射长春瑞滨,模型对照组与服用免疫调节剂组都注射了等量的长春瑞滨(长春瑞滨通过静脉注射的方式摄入到斑马鱼体内)。服用免疫调节剂组在注射长春瑞滨后摄入异丙肌苷等免疫调节剂。服用一段时间免疫调节剂后,我们观察斑马鱼T细胞荧光强度变化。【结果展示】图1. 斑马鱼T细胞表型图蓝色箭头所指红色荧光颗粒为T细胞可以看到,免疫调节剂组T细胞荧光强度与未注射长春瑞滨的正常对照组比较相似,没有出现明显的T细胞减少情况。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,免疫调节剂组的T细胞荧光强度与正常对照组相似,并未出现模型对照组T细胞减少的情况。2.本实验证实了异丙肌苷具有增强免疫力的功效。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】斑马鱼成鱼体长5 cm左右,其胚胎透明,在受精72 h后完成孵化,并在孵出后3个月内性成熟。成年斑马鱼的繁殖周期短(一般7 d左右),若条件适宜,成年雌性斑马鱼可定期产卵(每次200~300个)。在斑马鱼的早期胚胎及幼体的发育过程中,尚无性别分化,原始性腺都是相同的且具有双向发育的潜能,易受环境(温度、光照、pH值等)因素的影响而改变其遗传性别。对于雌性斑马鱼而言,产卵量是评价其繁殖力的常用生物指标,它与鱼类繁殖过程中的多个环节(卵子发育、雌雄交配行为、性激素刺激等)相关,并对环境化学物质具有高敏感性,能直接反应鱼类繁殖力变化。环境化学物质除了直接对亲代斑马鱼的生殖系统造成损害,还可能对其子代的正常生长发育。卵黄蛋白原在斑马鱼雌鱼成熟过程中发挥重要作用,成熟雌鱼在体内17β-雌二醇的刺激下,由肝脏合成的VTG经过血液到达卵巢并加工成卵黄蛋白,促进性腺发育。幼鱼和雄鱼在正常情况下不合成VTG,但在受到雌激素和类雌激素刺激时能合成VTG,导致鱼体内VTG浓度升高,出现雌性体征。鱼类的性腺发育和繁殖行为受到下丘脑-垂体-性腺轴(HPG 轴)的调控。下丘脑分泌促性腺激素释放激素(GnRH),其作用于脑垂体,刺激其分泌促黄体生成素(LH)和促卵泡素(FSH),这两种激素通过血液循环与相应的受体结合后作用于性腺,刺激性腺产生睾酮(T)、17β-雌二醇(E2)和 11-酮基睾酮(11-KT) 等类固醇激素,进而促进精子和卵子的发育和成熟。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成两组,进行21天的暴露实验,分别是正常对照组和服用供试品组(供试品通过溶解到养鱼用水中或灌胃的方式摄入到斑马鱼体内)。服用一段时间供试品后,观察每次的产卵量、受精率及孵化率;对受精卵进行子一代发育毒性与致畸性评价。在实验终点取斑马鱼的组织,检测卵黄蛋白原(VTG)含量及相关基因表达,并对性腺进行病理组织学检查,指标主要包括:睾丸卵母细胞、睾丸间质细胞增生、卵黄形成减少、精原细胞和滤泡增生;其他性腺损伤包括:卵母细胞闭锁、睾丸变性和分期改变。【结果展示】图1. 供试品对斑马鱼体内卵黄蛋白原(VTG)的影响可以看到,供试品组VTG有下降趋势,但与正常对照组比较没有显著性差异。 图2. 斑马鱼发育毒性与致畸性表型图可以看到,供试品组斑马鱼诱发眼睛变小,下颌异常,心血管毒性等。 图3. 斑马鱼性腺病理切片可以看到,供试品组斑马鱼精巢精子量变少,卵巢中卵母细胞体积变小、数量减少 。图4. 供试品对斑马鱼基因表达的影响可以看到,供试品组FSHβ、LHβ基因相较于正常对照组显著表达。【评价结论】1.经过各组斑马鱼的对比实验,摄入供试品组的斑马鱼体内VTG有下降趋势,子一代斑马鱼有致畸性,性腺病理切片有不同程度的异常,与性腺发育和繁殖行为相关基因的上调。2.本实验证实了该供试品对斑马鱼有生殖毒性。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】斑马鱼为鲤科短担尼鱼属的小型硬骨鱼,1998年国际经济合作与发展组织将斑马鱼胚胎发育方法列入测定单一化学品毒性的标准方法。由于斑马鱼的基因与人类基因的相似度达到87%,近年来斑马鱼被广泛应用于人类疾病模型及药物筛选、毒理学与环境检测中,使其成为新型的脊椎模式生物。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成两组,分别是正常对照和服用/注射供试品组(供试品通过溶解到养鱼用水中或胚胎注射的方式摄入到斑马鱼体内)。服用/注射药物一段时间后,我们对斑马鱼整体进行观察评价,观察斑马鱼心脏、脑部、耳、下颌、眼、肝脏、肠道、躯干/尾/脊索、肌肉/体节、鳍、体长、身体着色、循环系统、身体水肿和出血等毒性反应情况,统计毒性发生率。【结果展示】图1. 斑马鱼胚胎毒性表型图可以看到,服用/注射供试品组的斑马鱼眼变小、心包水肿、肝脏变性、卵黄囊吸收延迟、胃肠道发育延迟。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用/注射供试品组的组织器官产生明显的毒性表型,与正常对照组存在明显的差别。2.本实验证实了该供试品对斑马鱼有胚胎毒性。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】半数致死浓度(LC50)是指在动物急性毒性实验中,使受试动物半数死亡的毒性浓度。在比较各种污染物的毒性,不同种或不同发育阶段的动物对污染物的敏感性以及环境因素对毒性影响等方面的研究中,都以LC50为依据。常规急性毒性实验常采用啮齿类和非啮齿类动物进行,能较准确地反映药物的安全性,但实验周期一般较长,药物用量较大。用斑马鱼胚胎检验药物急性毒性,具有体积小,成本低,易于饲养,重复性好,便于观察,繁殖周期短,繁殖频率高,给药方式简单等诸多优点,因此它是一种理想的试验模型,用以确定药物暴露在胚胎中的毒性效应,评价药物半数致死浓度。根据实验终点斑马鱼的死亡率,通过使用OriginPro 8.0统计学软件,拟合半数致死浓度。【实验方案】我们将供试品设置一系列浓度,并设置一个正常对照组。同时设置3个生物学重复。药物通过溶解到养鱼用水中或灌胃的方式摄入到斑马鱼体内进行3天的暴露实验。每天观察记录斑马鱼死亡情况,药物处理结束后,统计各实验组的斑马鱼致死率,使用OriginPro 8.0统计学软件绘制最佳的剂量效应曲线,并计算LC50。【结果展示】图1. 斑马鱼“浓度-死亡率”效应曲线可以看到,利用OriginPro 8.0软件模拟得出药物LC50=8.0 μg/mL。【评价结论】1.根据药物“浓度-死亡率”的统计数据,利用OriginPro 8.0软件模拟得出药物的LC50=8.0 μg/mL。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】神经毒性通常指某些药物影响机体的神经传导,导致神经传导中断或减弱,从而影响机体的正常功能。斑马鱼的基因与人类基因的相似度达到87%,神经系统形成过程和发育机制与人类高度相似,在6 hpf(受精后6小时)神经系统开始发育,受精6天后所有神经系统发育完成。斑马鱼在短时间内形成整个神经系统,为神经毒性的评价带来了有利的条件。而且斑马鱼对药物神经毒性的预测准确性高,同时兼具快速、高效、经济的优点。我们评价斑马鱼神经毒性有3个指标:1.行为学;2.中枢神经凋亡细胞荧光信号强度;3. 外周运动神经长度。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成两组,分别是正常对照和服用/注射供试品组(供试品通过溶解到养鱼用水中或注射的方式摄入到斑马鱼体内)。服用/注射药物一段时间后,我们观察斑马鱼的运动行为,通过荧光染色观察中枢神经凋亡细胞,也可以利用转基因运动神经绿色荧光NBT品系斑马鱼观察外周运动神经长度。【结果展示】图1. 斑马鱼神经毒性运动轨迹图可以看到,服用/注射供试品组斑马鱼运动明显减少。图2. 斑马鱼光暗刺激下每分钟运动速度表型图可以看到,服用/注射供试品组斑马鱼对光暗刺激不敏感。图3. 斑马鱼中枢神经凋亡细胞表型图黄色虚线框内为中枢神经分析区域,绿色荧光小点为凋亡细胞可以看到,服用/注射供试品组斑马鱼中枢神经细胞凋亡明显增加。图4. 斑马鱼外周运动神经表型图可以看到,服用/注射供试品组斑马鱼外周运动神经明显缩短。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用/注射供试品组的斑马鱼运动明显减少且对光暗刺激不敏感,中枢神经细胞凋亡增加且外周运动神经缩短,与正常对照组存在明显的差别。2.本实验证实了该供试品对斑马鱼有神经毒性。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】斑马鱼的听觉外侧系统由内耳和侧线两个关键的感觉结构组成,斑马鱼具有典型的内耳结构,内耳的毛细胞和侧线的毛细胞在结构功能及分子水平上与哺乳动物的内耳毛细胞非常相似,包括对耳毒性药物的相似反应。经过特异性荧光染色(呈绿色),听力损伤的斑马鱼比正常斑马鱼毛细胞明显减少或缺失(荧光减弱或者消失)。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成两组,分别是正常对照和服用/注射供试品组(供试品通过溶解到养鱼用水中或注射的方式摄入到斑马鱼体内)。服用/注射药物一段时间后,我们对斑马鱼整体做毛细胞特异性染色,观察毛细胞的变化。【结果展示】图1. 斑马鱼毛细胞表型图绿色荧光颗粒为毛细胞可以看到,服用/注射供试品组斑马鱼毛细胞减少。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用/注射供试品组的斑马鱼毛细胞明显减少,与正常对照组存在明显的差别。2.本实验证实了该供试品对斑马鱼有听毒性。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】行为是动物毒性应激反应重要而敏感的指标,神经毒性往往会导致机体行为表现异常。斑马鱼的基因与人类基因的相似度达到87%,神经系统形成过程和发育机制与人类高度相似,且对于药物的反应也有着高度相似性。斑马鱼对药物行为毒性的预测准确性高,同时兼具快速、高效、经济的优点。我们评价斑马鱼行为毒性有4个指标:1.行为学;2.中枢神经凋亡细胞荧光信号强度;3. 外周运动神经长度;4. 脑变性发生率。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成两组,分别是正常对照和服用/注射供试品组(供试品通过溶解到养鱼用水中或注射的方式摄入到斑马鱼体内)。服用/注射药物一段时间后,我们观察斑马鱼的运动行为,通过荧光染色观察中枢神经凋亡细胞,也可以利用转基因运动神经绿色荧光NBT品系斑马鱼观察外周运动神经长度,同时可以观察脑变性发生率。【结果展示】图1. 斑马鱼行为毒性运动轨迹图可以看到,服用/注射供试品组斑马鱼运动明显减少。图2. 斑马鱼中枢神经凋亡细胞表型图黄色虚线框内为中枢神经分析区域,绿色荧光小点为凋亡细胞可以看到,服用/注射供试品组斑马鱼中枢神经细胞凋亡明显增加。图3. 斑马鱼外周运动神经表型图可以看到,服用/注射供试品组斑马鱼外周运动神经明显缩短。图4. 斑马鱼脑变性表型图可以看到,服用/注射供试品组斑马鱼脑部变性呈黑色。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用/注射供试品组的斑马鱼运动明显减少,中枢神经细胞凋亡增加,外周运动神经缩短且脑变性发生率增加,与正常对照组存在明显的差别。2.本实验证实了该供试品对斑马鱼有行为毒性。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】细胞都有一个固定死亡的程序,细胞凋亡通过去除潜在的损伤细胞和分化后多余的细胞来保护机体,在脊椎动物中尤为重要。在斑马鱼DNA数据库中已鉴定出许多与哺乳动物同一家族的凋亡相关基因。这暗示了大部分凋亡通路在斑马鱼与高等脊椎动物的进化上有很高的保守性,因此,在凋亡的研究领域上,斑马鱼被认为是一种有效的实验动物模型。吖啶橙(AO)能透过胞膜完整的细胞,嵌入细胞核DNA,使之发出明亮的绿色荧光。凋亡的细胞呈现为染色增强,荧光更为明亮,均匀一致的圆状或固缩状、团块状结构。基因组DNA断裂时,暴露的3'-OH可以在末端脱氧核苷酸转移酶的催化下加上荧光素 (FITC) 标记的dUTP (fluorescein-dUTP) ,从而可以通过荧光显微镜或流式细胞仪进行检测。用两种不同的特异性荧光染色,均可以在荧光显微镜下观察到凋亡细胞。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成两组,分别是正常对照组和供试品组。供试品通过服用的方式摄入到斑马鱼体内(供试品通过溶解到养鱼用水中的方式摄入到斑马鱼体内)。服用一段时间供试品后,我们分别对斑马鱼整体做两种凋亡细胞特异性染色,用荧光显微镜观察细胞凋亡。【结果展示】可以看到,供试品组的凋亡细胞荧光强度与正常对照组比较明显增强。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,供试品组斑马鱼出现凋亡细胞荧光强度比正常对照组明显增强。2.本实验证实了供试品诱发斑马鱼细胞凋亡。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】斑马鱼胚胎在母体外发育,从合子期到孵化期仅72小时,且发育的完整过程均是透明的,利于实时观察和检测。斑马鱼幼鱼长3~4毫米,拥有6-384孔板的高通量检测体系,可实现低费-高效筛选。斑马鱼与人类基因同源性达到87%,用于药物的体内快速评价实验结果可比性强。故可以利用斑马鱼早期各个阶段的发育形态,准确高效的确定药物暴露在胚胎中的毒性,广泛应用于药物的发育毒性与致畸性研究。实验结束后,以各浓度组织器官反应及死亡情况的统计学分析结果评价药物对斑马鱼的毒性,并对典型毒性器官进行拍照。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成两组,分别是正常对照组和药物组。其中正常对照组未摄入待测药物,药物组按照既定浓度摄入了不同浓度的待测药物(待测药物通过溶解到养鱼用水中的方式摄入到斑马鱼体内)。在药物暴露过程中,每天观察记录各个浓度组斑马鱼的死亡情况,并及时挑走死鱼。实验结束后,统计斑马鱼死亡情况并使用OriginPro 8软件拟合数据曲线,获得药物的最大非致死浓度(MNLC)和LC10。在药物暴露一段时间后,我们在显微镜下观察记录斑马鱼身体各个指标的情况并对典型毒性器官进行拍照。【结果展示】图1. 斑马鱼发最大非致死浓度(MNLC)和LC10摸索数据拟合图可以看到,该药物的MNLC为313 μg/mL,LC10为350 μg/mL。图2. 斑马鱼发育毒性与致畸性表型图H=Heart;J=Jaw;In=Intestinal tract;L=Liver;Y=Yolk sac;E=Eye可以看到,药物组较正常对照组出现卵黄囊吸收延迟、心包水肿、体长变短、眼变小和肝变形。【评价结论】1.该药物的MNLC为313 μg/mL,LC10为350 μg/mL,诱发斑马鱼卵黄囊吸收延迟、心包水肿、体长变短、眼变小和肝变形。2.本实验证实了该药物对斑马鱼有发育毒性与致畸性风险。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】斑马鱼的听觉外侧系统由内耳和侧线两个关键的感觉结构组成,斑马鱼具有典型的内耳结构,内耳的毛细胞和侧线的毛细胞在结构功能及分子水平上与哺乳动物的内耳毛细胞非常相似,包括对耳毒性药物的相似反应。经过DASPEI特异性荧光染色(呈绿色),听力损伤的斑马鱼比正常斑马鱼毛细胞明显减少或缺失(荧光减弱或者消失)。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成两组,分别是正常对照和服用/注射供试品组(供试品通过溶解到养鱼用水中或注射的方式摄入到斑马鱼体内)。服用/注射药物一段时间后,我们对斑马鱼整体做毛细胞特异性染色,观察毛细胞的变化。【结果展示】图1. 斑马鱼“浓度-死亡率”效应曲线供试品最大非致死浓度(MNLC)和LC10图2. 斑马鱼毛细胞表型图绿色荧光点为听细胞聚集的神经丘可以看到,服用/注射供试品组斑马鱼毛细胞减少。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用/注射供试品组的斑马鱼毛细胞明显减少,与正常对照组存在明显的差别。2.本实验证实了该供试品对斑马鱼有听毒性。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】斑马鱼成鱼体长5 cm左右,其胚胎透明,在受精72 h后完成孵化,并在孵出后3个月内性成熟。成年斑马鱼的繁殖周期短(一般7 d左右),若条件适宜,成年雌性斑马鱼可定期产卵(每次200~300个)。斑马鱼与人类的基因相似率高达87%, 与哺乳类动物相比, 斑马鱼的信号传导以及生理结构和功能方面都非常相似。斑马鱼能够对药物在体内的分布情况、吸收情况、代谢以及排泄等生理动态方面提供准确的信息, 尤其对小分子所引起的内分泌紊乱、再生毒性、行为缺陷、致畸、心血管毒性、肝毒性等毒性反应与人具有高度相似性。因此,使用斑马鱼作为药物早期的安全性评价是非常可靠的。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成两组,分别是正常对照组和服用供试品组(供试品通过溶解到养鱼用水中摄入到斑马鱼体内)。供试品通过水溶暴露给药或灌胃等方式处理斑马鱼3个月。服用一段时间供试品后,将斑马鱼固定、脱水、包埋、切片,进行H&E染色,我们观察斑马鱼各组织脏器结构病理变化。【结果展示】图1. 斑马鱼致癌性表型图可以看到,服用供试品组11.1 µg/mL浓度组组织结构异常,产生癌变。异位的精原细胞簇可见于中央小叶,远离基膜。精子生成明显减少。【评价结论】1.经过每组10尾斑马鱼的对比实验,服用供试品组的斑马鱼精巢结构明显异常,与正常对照组存在明显的差别。2.本实验证实了该供试品对斑马鱼有致癌性。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】斑马鱼皮肤结构与功能与人类高度相似,斑马鱼皮肤含有基底层、棘层、颗粒层、透明层和表皮角质细胞层;另外尚有与人皮肤结构相同的固有层、半桥粒、黑色素细胞、血管和皮下脂肪细胞等。斑马鱼皮肤间质结缔组织、胶原及其临近的纤维母细胞及皮肤基因表达亦与人类皮肤相似。我们评价斑马鱼皮肤肌肉毒性有4个指标:1.皮肤刺激;2.肌肉纹理;3.皮肤凋亡细胞定量;4.皮肤色素变化。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成两组,分别是正常对照组和供试品组(供试品通过溶解到养鱼用水中摄入到斑马鱼体内)。皮肤吸收供试品一段时间后,我们通过中性粒转基因荧光斑马鱼,观察皮肤/肌肉刺激性;通过表型拍照,观察肌肉纹理及皮肤色素变化;通过AO染色凋亡细胞,观察皮肤细胞凋亡情况。【结果展示】图1. 斑马鱼皮肤刺激性典型图片可以看到,供试品组皮肤/肌肉可见明显中性粒细胞聚集。图2. 斑马鱼皮肤损伤典型图片可以看到,供试品组可见明显肌肉纹理不清晰。图3. 斑马鱼凋亡细胞表型图可以看到,供试品组尾部可见明显凋亡(绿色荧光亮点)。图4. 斑马鱼皮肤色素异常表型图可以看到,供试品组躯干可见明显色素异常(黄色虚线区域)。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,供试品组的斑马鱼皮肤肌肉产生明显的毒性表型(包括肌肉纹理异常和色素异常),在斑马鱼尾部可见明显的凋亡细胞,在躯干部可见明显的中性粒细胞聚集。2.本实验证实了该供试品对斑马鱼有皮肤肌肉毒性。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价

【评价原理】免疫毒性是指化合物对机体免疫系统的损伤作用,包括两类,一是免疫抑制,即免疫系统的广泛抑制,可致机体对感染的易感性增加及肿瘤发生率增高;另一是免疫增强,即免疫系统反应性过度增强,可能包括免疫性产生,过敏反应(超敏反应或变态反应)、自身免疫反应以及不良免疫刺激等。斑马鱼具有先天免疫系统和获得性免疫系统,与果蝇和线虫模型相比,斑马鱼的免疫系统发育的更完整。研究证实斑马鱼与哺乳动物一样,具有T细胞、B细胞、自然杀伤细胞,其免疫系统对于环境中的免疫毒性物质(包括哺乳动物)非常的敏感。免疫毒性指标有3个:(1)应用转基因中性粒细胞绿色荧光斑马鱼,观察中性粒细胞数量;(2)应用转基因巨噬细胞绿色荧光斑马鱼,观察巨噬细胞数量(荧光强度);(3)注射红色荧光微球,巨噬细胞吞噬微球排出体外,用体内微球的数量反映巨噬细胞吞噬功能。(4)检测T/B相关基因(rag1和rag2)表达。【实验方案】我们将受测试斑马鱼分成二组,分别是正常对照和服用/注射供试品组(供试品通过溶解到养鱼用水中或注射的方式摄入到斑马鱼体内)。服用/注射供试品一段时间后,我们对斑马鱼检测中性粒细胞和巨噬细胞计数、巨噬细胞吞噬功能和T/B相关基因(rag1和rag2)表达。【结果展示】(1)中性粒细胞数量 图1. 斑马鱼中性粒细胞表型图绿色小点为中性粒细胞可以看到,服用供试品组斑马鱼体内中性粒细胞数量比正常对照组明显减少。(2)巨噬细胞数量图2. 斑马鱼巨噬细胞表型图可以看到,服用供试品组斑马鱼体内巨噬细胞数量比正常对照组明显减少。(3)巨噬细胞吞噬功能图3. 斑马鱼巨噬细胞表型图可以看到,服用供试品组的吞噬颗粒的巨噬细胞数量与正常对照组比较有明显减少,说明巨噬细胞吞噬功能下降。(4)T/B相关基因表达(rag1和rag2)图4. 斑马鱼rag1和rag2表达左图为rag1基因相对表达量,右图为rag2基因相对表达量可以看到,服用供试品组的rag1和rag2相对表达量与正常对照组比较均有减少。【评价结论】1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用供试品组的中性粒细胞和巨噬细胞数量与正常对照组比较均有减少,其巨噬细胞吞噬功能有所下降,且rag1和rag2相对表达量减少。2.本实验证实了该供试品具有免疫毒性。更多项目服务,请拨电话咨询:0571-83782130,项目经理手机 17364531293(微信同号)

询价
1...... 45678... 11总:210条