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【评价原理】
斑马鱼胚胎视力发育迅速,受精后发育4天的幼鱼就已经依赖视觉线索进行捕食和躲避行为。斑马鱼不仅在角膜、晶状体、脉络膜、视网膜以及血管化和神经支配等结构上和人类的眼睛有明显的相似性,而且还有保守的基因表达、细胞构成和组织结构,因此为研究药物眼部毒性提供了一个极好的模型。
我们评价斑马鱼眼毒性有4个指标:1.眼睛大小;2.眼部细胞凋亡;3.眼部血管面积;4.眼部病理切片。
【实验方案】
我们将受测试斑马鱼分成两组,分别是正常对照组和供试品组,供试品组(药物通过溶解到养鱼用水中或灌胃的方式摄入到斑马鱼体内)。
服用一段时间眼保护剂后,我们在解剖显微镜下观察眼睛大小;整体做凋亡细胞特异性染色,观察眼部细胞凋亡;通过荧光显微镜观察眼部血管面积,同时制作成病理切片观察眼部的病理结构变化。
【结果展示】

图1. 斑马鱼眼睛表型图
箭头指示区域为眼
可以看到,药物组眼睛相较于正常对照组明显减小。

图2. 斑马鱼眼细胞凋亡表型图
黄色虚线区域为眼,绿色小点为凋亡细胞
可以看到,药物组的凋亡细胞较正常对照组明显增多。

图3. 斑马鱼眼部血管面积
黄色虚线标记血管面积
可以看到,药物组眼睛血管面积相较于正常对照组明显增加。

图4. 眼部凋亡细胞病理切片
可以看到,药物组出现较多的凋亡细胞,表现为细胞固缩、染色质边集,视网膜结构异于正常对照组。
【评价结论】
1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,药物组斑马鱼眼睛明显变小,凋亡细胞明显增多,眼部血管面积明显增多,在病理切片中出现较多的凋亡细胞,表现为细胞固缩、染色质边集,视网膜结构异常。
2.本实验证实了药物的眼毒性。
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暴露于生活环境中的皮肤,接触到有毒有害物质后可能引起一定程度的皮肤炎症,出现皮肤红肿、瘙痒等现象。一些医美类化妆品除具有常规护肤功效外还能起到抗炎舒缓作用。通过斑马鱼技术能有效评价化妆品及其原料抗炎舒缓功效。
【评价原理】
化妆品对皮肤的刺激表型主要表现为皮肤炎症,炎症早期主要表现为毛细血管扩张、通
透性亢进和水肿。
十二烷基磺酸钠(SLS)是人体皮肤刺激物模型斑贴试验常见的阳性对照物,SLS刺激后能诱发表皮炎症细胞浸润,刺激物进入斑马鱼体内,诱导炎症反应,中性粒细胞发生免疫应答,向皮肤表皮迁移并聚集。
【实验方案】
我们将受测试斑马鱼分成三组,分别是正常对照组、模型对照组和供试品组(供试品通过溶解到标准稀释水中的方式接触到斑马鱼皮肤)。
正常对照组不做处理,模型对照组仅用SLS处理,供试品组在用SLS的同时添加受试化妆品。孵育一段时间后,我们将斑马鱼整体放到荧光显微镜下拍照,以皮肤表面中性粒
细胞数量评价供试品的抗炎舒缓功效。
【结果展示】

图1 斑马鱼皮肤中性粒细胞表型图
黄色虚线区域为计算区域,绿色荧光点为中性粒细胞
可以看到,供试品组斑马鱼的中性粒细胞数目比模型对照组少,与正常对照组相似。
【评价结论】
1.经过各组斑马鱼的对比实验,水溶给予供试品组的斑马鱼中性粒细胞数目比模型对照组少,与正常对照组相似。。
2.本实验证实了该供试品具有抗炎舒缓功效。
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【评价原理】
免疫毒性是指化合物对机体免疫系统的损伤作用,包括两类,一是免疫抑制,即免疫系统的广泛抑制,可致机体对感染的易感性增加及肿瘤发生率增高;另一是免疫增强,即免疫系统反应性过度增强,可能包括免疫性产生,过敏反应(超敏反应或变态反应)、自身免疫反应以及不良免疫刺激等。
斑马鱼具有先天免疫系统和获得性免疫系统,与果蝇和线虫模型相比,斑马鱼的免疫系统发育的更完整。研究证实斑马鱼与哺乳动物一样,具有T细胞、B细胞、自然杀伤细胞,其免疫系统对于环境中的免疫毒性物质(包括哺乳动物)非常的敏感。
免疫毒性指标有3个:(1)应用转基因中性粒细胞绿色荧光斑马鱼,观察中性粒细胞数量;(2)应用转基因巨噬细胞绿色荧光斑马鱼,观察巨噬细胞数量(荧光强度);(3)注射红色荧光微球,巨噬细胞吞噬微球排出体外,用体内微球的数量反映巨噬细胞吞噬功能。(4)检测T/B相关基因(rag1和rag2)表达。
【实验方案】
我们将受测试斑马鱼分成二组,分别是正常对照和服用/注射供试品组(供试品通过溶解到养鱼用水中或注射的方式摄入到斑马鱼体内)。
服用/注射供试品一段时间后,我们对斑马鱼检测中性粒细胞和巨噬细胞计数、巨噬细胞吞噬功能和T/B相关基因(rag1和rag2)表达。
【结果展示】
(1)中性粒细胞数量

图1. 斑马鱼中性粒细胞表型图
绿色小点为中性粒细胞
可以看到,服用供试品组斑马鱼体内中性粒细胞数量比正常对照组明显减少。
(2)巨噬细胞数量

图2. 斑马鱼巨噬细胞表型图
可以看到,服用供试品组斑马鱼体内巨噬细胞数量比正常对照组明显减少。
(3)巨噬细胞吞噬功能
图3. 斑马鱼巨噬细胞表型图
可以看到,服用供试品组的吞噬颗粒的巨噬细胞数量与正常对照组比较有明显减少,说明巨噬细胞吞噬功能下降。
(4)T/B相关基因表达(rag1和rag2)

图4. 斑马鱼rag1和rag2表达
左图为rag1基因相对表达量,右图为rag2基因相对表达量
可以看到,服用供试品组的rag1和rag2相对表达量与正常对照组比较均有减少。
【评价结论】
1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用供试品组的中性粒细胞和巨噬细胞数量与正常对照组比较均有减少,其巨噬细胞吞噬功能有所下降,且rag1和rag2相对表达量减少。
2.本实验证实了该供试品具有免疫毒性。
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【评价原理】
斑马鱼的听觉外侧系统由内耳和侧线两个关键的感觉结构组成,斑马鱼具有典型的内耳结构,内耳的毛细胞和侧线的毛细胞在结构功能及分子水平上与哺乳动物的内耳毛细胞非常相似,包括对耳毒性药物的相似反应。
经过DASPEI特异性荧光染色(呈绿色),听力损伤的斑马鱼比正常斑马鱼毛细胞明显减少或缺失(荧光减弱或者消失)。
【实验方案】
我们将受测试斑马鱼分成两组,分别是正常对照和服用/注射供试品组(供试品通过溶解到养鱼用水中或注射的方式摄入到斑马鱼体内)。
服用/注射药物一段时间后,我们对斑马鱼整体做毛细胞特异性染色,观察毛细胞的变化。
【结果展示】

图1. 斑马鱼“浓度-死亡率”效应曲线
供试品最大非致死浓度(MNLC)和LC10

图2. 斑马鱼毛细胞表型图
绿色荧光点为听细胞聚集的神经丘
可以看到,服用/注射供试品组斑马鱼毛细胞减少。
【评价结论】
1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用/注射供试品组的斑马鱼毛细胞明显减少,与正常对照组存在明显的差别。
2.本实验证实了该供试品对斑马鱼有听毒性。
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【评价原理】
炎症是免疫系统对组织损伤和感染的一种反应,主要特点就是白细胞(粒细胞、巨噬细胞)会聚集在感染组织周围。斑马鱼的免疫系统非常类似于哺乳动物。创伤发生时,中性粒细胞、巨噬细胞对创伤性炎症几乎同时作出应答,中性粒细胞迁移速度快,先募集到损伤部位处,随后巨噬细胞才到达。数小时后,炎症开始消退,巨噬细胞和中性粒细胞离开损伤部位。内毒素(LPS)是革兰氏阴性菌细胞壁的组成成分,我们将其注射到斑马鱼卵黄囊,诱导炎症介质的产生。斑马鱼的中性粒细胞发生免疫应答,聚集在卵黄囊。
采用转基因中性粒细胞荧光鱼(呈绿色),可在荧光显微镜在观察到斑马鱼卵黄囊的中性粒细胞比正常斑马鱼明显增多。
【实验方案】
我们将受测试斑马鱼分成三组,分别是正常对照组、模型对照组和服用抗炎组。其中正常对照组未注射LPS,模型对照组和抗炎组均注射LPS(LPS通过注射到卵黄囊的方式摄入到斑马鱼体内)。抗炎药组在注射LPS之前摄入吲哚美辛、阿司匹林、布洛芬和双氯芬酸之类的抗炎药。
服用一段时间抗炎药后,我们观察斑马鱼卵黄囊内中性粒细胞数量,并通过Q-PCR检测TNF-α、COX-2、IL-1β、IL-6和IL-10炎症相关因子的表达。
【结果展示】

图1. 斑马鱼卵黄囊内中性粒细胞表型图
黄色虚线区域为卵黄囊,绿色颗粒为中性粒细胞
可以看到,服用/注射抗炎药组卵黄囊内中性粒细胞比模型对照组明显,未出现中性粒细胞大量募集情况。
以IL-6、IL-10基因为例,提供柱状图。

图2. 斑马鱼IL-6基因相对表达量
与模型对照组比较,**p < 0.01
可以看到,服用/注射抗炎药组斑马鱼与模型对照组比较,IL-6基因表达明显下调。

图3. 斑马鱼IL-10基因相对表达量
与模型对照组比较,***p < 0.001
可以看到,服用/注射抗炎药组斑马鱼与模型对照组比较,IL-10基因表达明显下调。
【评价结论】
1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用/注射抗炎药组卵黄囊内中性粒细胞数量比正常对照组略多,未出现模型对照组中性粒细胞募集情况,且TNF-α、COX-2、IL-1β、IL-6和IL-10炎症因子明显下调。
2.本实验证实了吲哚美辛、阿司匹林、布洛芬和双氯芬酸具有显著的抗炎作用,且抑制TNF-α、COX-2、IL-1β、IL-6和IL-10炎症相关因子的表达。
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【评价原理】
炎症是免疫系统对组织损伤和感染的一种反应,主要特点就是白细胞(粒细胞、巨噬细胞)会聚集在感染组织周围。斑马鱼的免疫系统非常类似于哺乳动物。创伤发生时,中性粒细胞、巨噬细胞对创伤性炎症几乎同时作出应答,中性粒细胞迁移速度快,先募集到损伤部位,随后巨噬细胞才到达。数小时后,炎症开始消退,巨噬细胞和中性粒细胞离开损伤部位。用手术刀截断斑马鱼尾鳍,诱发急性损伤,促使斑马鱼中性粒细胞发生免疫应答。
采用转基因中性粒细胞荧光鱼(呈绿色),可在荧光显微镜在观察到尾鳍截断的斑马鱼创面中性粒细胞数量比正常斑马鱼明显增加。
【实验方案】
我们将受测试斑马鱼分成三组,分别是正常对照组、模型对照组和服用抗炎药组。其中正常对照组未截断尾鳍,模型对照组和服用抗炎药组均截断尾鳍。服用抗炎药组在切断尾鳍后摄入吲哚美辛、阿司匹林、布洛芬、双氯芬酸之类的抗炎药。
服用一段时间抗炎药后,我们观察斑马鱼尾鳍中性粒细胞数量,并通过Q-PCR检测TNF-α、COX-2、IL-1β、IL-6和IL-10炎症相关因子的表达。
【结果展示】

图1. 斑马鱼尾鳍炎症中性粒细胞表型图
黄色虚线区域为尾鳍,绿色颗粒为中性粒细胞
可以看到,服用/注射抗炎药组尾鳍中性粒细胞与正常对照组相似,未出现创面中性粒细胞募集情况。
以TNF-α、COX-2基因为例,提供柱状图。

图2. 斑马鱼TNF-α基因相对表达量
与模型对照组比较,**p < 0.01
可以看到,服用/注射抗炎药组斑马鱼与模型对照组比较,TNF-α基因表达明显下调。

图3. 斑马鱼COX-2基因相对表达量
与模型对照组比较,***p < 0.001
可以看到,服用/注射抗炎药组斑马鱼与模型对照组比较,COX-2基因表达明显下调。
【评价结论】
1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用/注射抗炎药组尾鳍中性粒细胞数量与正常对照组相似,未出现创面中性粒细胞募集情况,且TNF-α、COX-2、IL-1β、IL-6和IL-10炎症因子明显下调。
2.本实验证实了吲哚美辛、阿司匹林、布洛芬、双氯芬酸具有显著的抗炎作用,且抑制TNF-α、COX-2、IL-1β、IL-6和IL-10炎症相关因子的表达。
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【评价原理】
斑马鱼成鱼体长5 cm左右,其胚胎透明,在受精72 h后完成孵化,并在孵出后3个月内性成熟。成年斑马鱼的繁殖周期短(一般7 d左右),若条件适宜,成年雌性斑马鱼可定期产卵(每次200~300个)。斑马鱼与人类的基因相似率高达87%, 与哺乳类动物相比, 斑马鱼的信号传导以及生理结构和功能方面都非常相似。斑马鱼能够对药物在体内的分布情况、吸收情况、代谢以及排泄等生理动态方面提供准确的信息, 尤其对小分子所引起的内分泌紊乱、再生毒性、行为缺陷、致畸、心血管毒性、肝毒性等毒性反应与人具有高度相似性。因此,使用斑马鱼作为药物早期的安全性评价是非常可靠的。
【实验方案】
我们将受测试斑马鱼分成两组,分别是正常对照组和服用供试品组(供试品通过溶解到养鱼用水中摄入到斑马鱼体内)。供试品通过水溶暴露给药或灌胃等方式处理斑马鱼3个月。
服用一段时间供试品后,将斑马鱼固定、脱水、包埋、切片,进行H&E染色,我们观察斑马鱼各组织脏器结构病理变化。
【结果展示】

图1. 斑马鱼致癌性表型图
可以看到,服用供试品组11.1 µg/mL浓度组组织结构异常,产生癌变。异位的精原细胞簇可见于中央小叶,远离基膜。精子生成明显减少。
【评价结论】
1.经过每组10尾斑马鱼的对比实验,服用供试品组的斑马鱼精巢结构明显异常,与正常对照组存在明显的差别。
2.本实验证实了该供试品对斑马鱼有致癌性。
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【评价原理】
蛋黄粉中60%为脂类,用蛋黄粉喂食斑马鱼,可以使斑马鱼血液中的脂肪含量快速升高,从而建立斑马鱼高血脂症模型。
经过油红O特异性脂肪染色(与组织内甘油三酯等脂肪滴结合呈橘红色),高血脂斑马鱼血管内肉眼可见明显的脂质聚积。
【实验方案】
我们先将测试斑马鱼喂食蛋黄粉(蛋黄粉通过溶解到养鱼用水中的方式摄入到斑马鱼体内),建立高血脂模型后,再将受测试斑马鱼分成三组,分别是正常对照组(不喂食蛋黄粉),模型对照组和服用降脂剂组,服用降脂组摄入阿托伐他汀钙之类的降脂剂。
服用一段时间降脂剂后,我们对斑马鱼整体做脂肪特异性染色,观察体内脂质聚积的变化。同时利用甘油三酯试剂盒检测斑马鱼体内甘油三酯含量的变化。
【结果展示】

图1. 斑马鱼血脂表型图
橘红色脂滴为血脂
可以看到,服用降脂剂组的血脂聚积情况与模型对照组比较明显减少。

图2. 斑马鱼甘油三酯含量(mmol/gprot)
与模型对照组比较,*** p < 0.001
从生化指标可以看出,服用降脂剂组的斑马鱼整体甘油三酯含量与模型对照组比较明显降低。
【评价结论】
1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用降脂产品组的血脂聚积情况和整体甘油三酯含量与模型对照组比较明显减少。
2.本实验证实了降脂产品具有显著的降脂作用。
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针对HJ 1455—2026 水质急性毒性的测定斑马鱼法标准的执行,环特实验室(HunterLab)具备完善检测、监测平台的搭建能力,为用户提供高性价比、从 0 到 1 快速建成合规斑马鱼水质急性毒性监测体系的整体解决方案。
一、交付目标
通过全套自研斑马鱼养殖与分析设备、专业技术与团队培训,以及高响应的运维保障体系,助力客户构建100%符合《HJ 1455—2026水质 急性毒性的测定 斑马鱼法》标准要求的高稳定性、高性价比的一站式水质监测检测斑马鱼实验平台。
二、独家优势
● 16年斑马鱼养殖、280多个模型(近1100个指标)开发与技术应用经验
● 全球第一家(2012年)获得AAALAC认证、并连续4次(12年)获得“Full Accreditation”的斑马鱼实验室(该组织以环特实验室运行体系作为该类实验室认证的重要参考依据)
● 作为唯一企业参与《GB/T39649-2020实验动物 实验鱼质量控制》标准制订的调研、技术论证、标准草案的重点意见征求和反馈
● 国内第一家(2022年1月)同时获批斑马鱼“实验动物生产许可证(SCXK浙2022-0003)”与“实验动物使用许可证(SYXK浙2022-0004)”的机构
● 作为第一起草人发布国内第一部斑马鱼实验室建设规范团标《T/CAS 768—2023》
● 全系自研斑马鱼实验室专用设备集群,经谭建荣院士领衔的专家委员会联合科技成果鉴定(2025年),被评定为“国际先进水平”(国内唯一,且多项指标填补国际空白)
三、交付内容
(一)场地规划与设计
具有100+斑马鱼实验室设计经验,根据实际场地规划出合规合理的斑马鱼实验室,避免二次改造、空间浪费,温湿度、光照、通风、给排水标准化设计,出具平面布局图、水电图、设备点位图,一站式落地。
(二)定制化标准设备集群
根据急性毒性测定方法所需要的装置设备,推出标准适配、高性价比、精简高效配套的实验设备,剔除冗余配置,保留核心功能,一次性投入更低,长期使用更划算,包含斑马鱼养殖系统、急性毒性实验系统、PH计、便携式溶氧测定仪、照度计、温度计等
1、斑马鱼养殖系统
● 满足外购实验斑马鱼≥9 天驯养及自主繁育双重需求。
● 自动控温、水质循环、过滤增氧、光照周期可调,稳定维持驯养环境。
● 适配 HJ 1455—2026 对受试生物驯养周期的严格要求。
● 可规模化繁育标准实验用幼鱼,降低长期实验成本。
2、急性毒性实验系统
● 支持静态法、半静态法两种国标实验方式。
● 集成标准配水、精准分配、恒温、控光、pH 稳定等功能。
● 多组实验独立运行,条件一致,减少系统误差。
● 适配预实验、正式实验、空白对照、参比物试验全流程。
3、配套检测仪器
● pH 计、便携式溶氧测定仪、照度计、温度计等实验标准必备仪器。
● 出厂提供CNAS认证公司仪器校准报告,无需额外付费校准,省时省钱。
(三)现场安装与调试验收
● 设备到货、拆箱、安装、通水通电全程一体化实施。
● 系统调试:温度、光照、溶氧、pH、配水精度逐项校准达标。
● 交付即达标,直接开展正式检测。
(四)全流程技术培训
● 标准解读:HJ 1455—2026 条文、适用范围、质控要点、结果判定。
● 设备实操:养殖系统、实验系统、配套仪器操作与维护。
● 实验全流程:提供 SOP、流程图,降低人员培训成本,保证实验人员快速上岗、受试鱼挑选、驯养、暴露实验、观察记录、死亡判定等。
(五)合规实验鱼种与耗材供应
● 具有斑马鱼实验动物生产许可证和实验动物使用许可证,可提供符合 GB/T 39649的健康斑马鱼种鱼和实验用鱼,来源可溯质量有保障,提供实验动物质量合格证,保障实验用鱼稳定,为实验护航。
● 可提供10年斑马鱼从业人员推荐的常用斑马鱼实验耗材。
四、代表案例

▲佛山市南海区人民医院36套养殖系统交付

▲上海海洋大学60套养殖系统交付
服务咨询
水质检测HJ1455标准解决方案、斑马鱼实验室系统设备服务详细内容,请拨电话咨询:0571-83782130,手机 17364531293(微信同号)。
【评价原理】
斑马鱼和哺乳动物的心脏有相似的功能,包括血流方向、由专门的心内膜肌肉组织驱动的高压系统、由电子系统调节的心律以及与起搏活动相关的心跳。而且斑马鱼幼鱼通体透明,血细胞在心脏和血液循环系统的堆积非常容易观察,因而利用斑马鱼模型研究心血管毒性极为方便。
我们评价斑马鱼心血管毒性有4个指标:1.心率;2.心节律;3.心包水肿面积;4.静脉瘀血面积。
【实验方案】
我们将受测试斑马鱼分成两组,分别是正常对照和服用/注射供试品组(供试品通过溶解到养鱼用水中或注射的方式摄入到斑马鱼体内)。
服用/注射药物一段时间后,我们对斑马鱼的心脏进行观察评价。
【结果展示】

图1. 斑马鱼心血管毒性表型图
红色虚线框内为心脏
可以看到,服用/注射供试品组的斑马鱼出现明显的心包水肿。
【评价结论】
1.经过每组30尾斑马鱼的对比实验,服用/注射供试品组的斑马鱼出现明显的心包水肿,与正常对照组存在明显的差别。
2.本实验证实了该供试品对斑马鱼有心血管毒性。
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