动物类型：裸鼠造模试剂：肿瘤细胞或肿瘤组织块造模方法：一般是皮下注射成瘤（腋下或背部皮下 ）接种细胞密度1*10^6~5*10^7cell/ml，接种0.1ml~0.2ml，就是将培养的细胞收集起来调整到适宜浓度重悬于不含血清的培养液或PBS中，放于冰盒中携至动物房，直接注射即可。死亡率：10%，成功率：90%左右

动物：小鼠，SD大鼠（1）造模试剂：高脂饲料+STZ（链脲佐菌素）造模方法：小鼠喂食高脂饲料，4周后，禁食不禁水12h，腹腔注射1.1%的链脲佐菌素溶液110mg/kg 2-3次，正常对照组注射等体积生理盐水，2天后，禁食不禁水12h，尾部取血，测小鼠空腹血糖，选择高于11.1mmol/L的小鼠作为II型糖尿病小鼠模型。死亡率：0%，成功率：90%左右（2）造模试剂：STZ（链脲佐菌素）造模方法：将一定量的链脲霉素（STZ）溶于0.05 M柠檬酸缓冲溶液中(pH 4.5)，配成特定浓度的溶液。将链脲霉素溶液腹腔内注射到SD大鼠中，STZ的注射剂量100mg/kg，分两次给药，连续两天注射，每次注射的STZ剂量为50mg/kg。注射后24 h，给大鼠提供5%的饮用糖水以避免其血糖过低（这一步酌情而定）。STZ注射约4天后，(在第5天开始检测老鼠血糖，连续检测两天)测量老鼠的血糖浓度（每只老鼠都要测血糖，通过尾静脉取血），第6，7天血糖上升到200mg/ml以上即认为形成高血糖（需要记录有具体值）。死亡率：0%，成功率：90%左右

动物：小鼠，大鼠造模试剂：对氨基苯胂酸造模方法：动物全麻后，穿过鼓膜向双侧内耳内注射100mg/mL对氨基苯胂酸溶液0.05mL，注射后保持耳向上体位5min，然后用火棉胶塞紧以防外漏。模型鉴定：空中翻正反射成功率、接触翻正反射恢复时间及头偏和游泳行为学评分对小鼠前庭功能作评估。并通过行为学观察动物模型是否出现眩晕、恶心、呕吐、眼震，头眼震样摆动，头偏向同侧，站立不稳，倾向患侧等症状。如有类似症状，说明模型构建成功，可以用于前庭损伤实验研究。

动物：BALB/C小鼠造模试剂：卵血清白蛋白OVA造模方法：致敏：小鼠腹腔内注射含500ug/mlOVA+20mg/ml氢氧化铝的生理盐水溶液，200ul/鼠。第1、8、15天重复注射一次，（共3次）。刺激：第22-29天，每天鼻腔滴入20ul 40mg/ml OVA溶液（微量移液器），共8次。 死亡率：0%，成功率：90%

动物：BALB/C小鼠造模试剂：卵血清白蛋白OVA造模方法：致敏：小鼠腹腔内注射含500ug/mlOVA+20mg/ml氢氧化铝的生理盐水溶液，200ul/鼠。第1、8、15天重复注射一次，（共3次）。刺激：第22-29天，每天鼻腔滴入20ul 40mg/ml OVA溶液（微量移液器），共8次。 死亡率：0%，成功率：90%

动物：SD大鼠造模试剂：手术造模方法：大鼠采用3.5%水合氯醛(1ml/100g)腹腔注射麻醉,将大鼠固定于大鼠固定架上，剪掉右后肢鼠毛，碘伏消毒二次，铺孔巾，暴露右后肢，再消毒2次，于右侧后肢股后外侧处行纵行长约6-8mm切口，暴露股二头肌，经肌间钝性分离，游离出粗大的坐骨神经，距坐骨结节6mm处(定位)，用小号持针器垂直钳夹坐骨神经，满扣2扣(定量)，持续钳夹10秒，重复3次，每次间隔10秒(定时)，钳夹操作由一人完成，分层缝合肌肉及皮肤，灌胃阿莫西林（100mg/100g）和腹腔注射庆大霉素（0.08万单位/100g）预防感染，连续3天。

动物类型：Balb/c小鼠，SD大鼠造模试剂：阿霉素造模方法：在非麻醉状态下一次性尾静脉注射阿霉素（10mg/kg体重）死亡率：30%

动物类型：SD大鼠，Wistar大鼠造模试剂：尿酸钠造模方法：用6号注射针在受试大鼠右侧踝关节背侧从45°方向插入胫骨肌腱内侧，将0.2ml尿酸钠溶液（2.5g/100ml）注入到踝关节腔。死亡率：0%，造模成功率：100%

动物：C57小鼠造模试剂：高脂高糖饲料+STZ造模方法：采用高脂高糖饲料喂养8周以后，以35mg/kg腹腔注射STZ。72h后测血糖和尿糖，空腹血糖超过13.8mmol/l，随机血糖高于16.7mmol/l，尿糖++++时，确定糖尿病模型建立。糖尿病造模成功4周后，测定尿微量蛋白，超过30mg/24h时，确定糖尿病肾病小鼠模型建立成功。死亡率：30%~50%或者直接购买db/db小鼠（需要db/m小鼠对照）

动物：小鼠造模试剂：CCl4或者对乙酰氨基酚造模方法：每只小鼠腹腔注射CCl4肝损伤诱导剂0.2mL/kg（CCl4与橄榄油1:1）或者灌胃0.5g/kg的对乙酰氨基酚造模，所有小鼠禁食不禁水，24h后，取血，分离血清，测量AST、ALT、LDH、MDA、GSH、TG的含量；将小鼠处死后，取出肝脏，称量并观察肝脏外观。死亡率：0%，成功率：90%左右

动物：BALB/c小鼠造模试剂：MPFH造模方法：乙醚麻醉后，以MPFH 100μL (含1*107CCU/mL) 缓慢滴入鼻腔使其进入气管支气管，连续 3d。死亡率：0%，成功率：100%

动物：大鼠造模试剂：阳离子牛血清白蛋白cationic bovine serum albumin，C-BSA造模方法：试剂准备：（1）将60mg的C-BSA用30ml的PBS充分溶解，制成2mg/ml的C-BSA溶液，再与等体积的弗氏不完全佐剂充分混匀为乳白色悬液，使乳化完全。（2）称取C-BSA 1625mg，与650mlPBS充分混匀，制成2.5mg/mlC-BSA溶液。（3）将C-BSA冷冻干燥后测等电点，使PI=10（4）造模前将大鼠放入代谢笼中，每笼一只，收取大鼠24h尿液，进行24h尿蛋白定量测定。先取1ml（1）中乳白色悬液，分别1次性注射于每只大鼠的双侧腋下、腹股沟处作多点皮下注射，观察1周，之后每只大鼠隔日尾静脉注射1ml（2）中2.5mg/mlC-BSA4mg，共3周。当造模大鼠出现大量蛋白尿，肾小球系膜细胞、系膜基质增加，肾小管上皮细胞明显水肿、部分小管腔内可见蛋白管型，并可见间质炎细胞浸润，判断造模成功

动物：SD大鼠造模试剂：手术造模方法：造模前禁食不禁水24h称重，以10%水合氯醛腹腔注射麻醉。麻醉大鼠仰卧固定于手术台上，常规备皮消毒后，颈部正中切口，暴露右侧颈总动脉，分离出颈内动脉、颈外动脉、结扎游离颈外动脉主干，分离颈内动脉主干至翼腭动脉，并在其起始部置一动脉夹。颈外动脉残端剪0.2mm小口，将栓线插入。轻推尼龙线尾端经颈总动脉分叉部沿颈内动脉入颅，至大脑中动脉。尼龙线插入深度由颈总动脉交叉部计18mm，缝合切口，栓塞30min后勿须再次麻醉，室温下禁食不禁水12h。在手术结束麻醉清醒后，观察神经症状，只有神经功能障碍在一级以上的大鼠才能保留下来。模型构建24h后TTC染色确定模型是否构建成功。

我们拥有专业的实验室、先进的实验设备和经验丰富的科研技术人员。技术团队包括研究员（博士后）2人，助理研究员（博士）4人，核心研究员（硕士）15人，主要致力于基因组学、转录组学、蛋白质组学、代谢组学、生物化学、病理检测、基因检测等技术在科研中的应用与推广。通过高度细分、完善的服务平台，为广大客户提供了完善的技术解决方案和服务。目前，协助发表的SCI及核心期刊上的学术文章达两千余篇，涉及临床医学、肿瘤生物学、免疫学、细胞生物学、分子生物学等生命科学、医学等诸多领域。更为可喜的是，公司于2015年投资建立了1800平方米的动物中心，能够为广大客户提供更为专业的实验动物饲养及造模服务。实验外包:1.基因组学：基因芯片、SNP检测、DNA甲基化检测、生物信息学分析2.转录组学：microRNA芯片、LncRNA芯片、表达谱芯片、RNA-seq3.蛋白质组学：2D-DIGE、SILAC、iTRAQ、TMT、Label-free、MRM4.基因检测：DNA/RNA提取、RT-PCR、Real-timePCR5.蛋白质检测：Western blot、Co-ip  EMSA、CHIP、免疫荧光、ELISA6.病理检测：HE染色、特殊染色、组织切片、免疫组化、流式细胞分选7.代谢组学：GC-MS、LC-MS、NMR8.细胞及动物模型：原代细胞、细胞模型、动物模型构建9.SCI文章：SCI文章评估建议、SCI文章设计咨询、SCI文章统计资料处理、SCI文章实验操作咨询、SCI文章编修翻译等