1973年，Kobylka和Carraway在乳腺上皮细胞中发现了一种在乳脂球中无法水解的膜蛋白，1978年，该分子被鉴定为血小板GPIV，一种介导血小板中血小板反应蛋白-1(TSP-1)结合的蛋白。随后，Tandon发现GPIV与白细胞分化抗原CD36具有重叠结构。随后，其他研究人员确定了CD36在血小板活化和细胞粘附中的作用。1993年，Abumrad及其同事证明了CD36的脂肪活性，之后将该蛋白在小鼠体内克隆并鉴定为人CD36的小鼠直系同源物，表明其在脂肪酸摄取中的作用。CD36现在被广泛认为是一种清道夫受体，可以吸收长链脂肪酸(LCFAs)和氧化低密度脂蛋白(ox-LDL)。CD36是一种清道夫受体，在多种细胞类型中表达。在脂质代谢中发挥重要作用，介导脂质摄取、免疫识别、炎症、分子粘附和凋亡。与血管生成、炎症反应、动脉粥样硬化性血栓性疾病以及代谢紊乱性糖尿病和肥胖症等有关。在免疫系统中，CD36介导树突状细胞抗原的获取和呈递，并支持调节性T细胞功能。研究表明靶向CD36可能是提高CD8+T细胞免疫疗法的抗肿瘤药效的有效策略，为临床治疗提供了新的思路和可能。[1]CD36与PPAR-β激活[2]CD36靶向作用破坏肿瘤内Treg细胞，并启动PD-1阻断肿瘤。具有抗CD36抗体的MOA: ①耗尽CD36+ Treg细胞。②阻断PPAR-和PPAR-依赖的代谢途径，降低线粒体活性和CD36表达水平，促进Treg细胞凋亡。③阻断TSP-1/CD36通路，促进TME血管生成。CD36调节肿瘤免疫[3]CD36在肿瘤微环境中发挥作用。CD36调节下游Src家族激酶促进抗血管生成、FAO以及化疗耐药和放疗耐药，从而导致肿瘤转移。CD36还通过EMT激活Wnt/TGF-β信号传导促进肿瘤转移。CD36摄取多种脂质，如ox-LDL、LCFAs和胆固醇。免疫细胞中的脂质沉积导致树突状细胞的无菌性炎症和抗原呈递功能障碍，从而诱导肿瘤免疫抑制。此外，CD36可以与凋亡细胞结合并激活交叉引物，这可能导致免疫抑制和肿瘤发展。BioMice百奥动物自主研发了人源化小鼠B-hCD36 mice和人源化细胞系B-hCD36 MC38助力科研。B-hCD36 miceB-hCD36小鼠血常规检测全血细胞计数(CBC)。采集雌性C57BL/6和B-hCD36小鼠（n=8，6-8周龄）的血液并进行全血细胞计数分析。B-hCD36小鼠的测量结果与C57BL/6小鼠相似，表明人源化不会改变血细胞组成和形态。数值表示为平均值±SEM。B-hCD36小鼠血生化检测B-hCD36小鼠的血生化试验。收集C57BL/6和B-hCD36小鼠（n=8，6-8周龄）的血清，并分析其指标水平。B-hCD36小鼠的测量结果与C57BL/6小鼠相似，表明人源化不会改变肝脏等相关组织的健康。数值表示为平均值±SEM。使用抗CD36抗体测试B-hCD36模型的抗体结合试验通过流式细胞术对纯合B-hCD36小鼠进行种属特异性CD36表达分析。收集野生型小鼠 (+/+)和纯合B-hCD36小鼠(H/H)的腹腔渗出巨噬细胞，并通过抗CD36抗体的流式细胞术进行分析。人CD36仅在纯合B-hCD36小鼠中可检测到，但在野生型小鼠中未检测到。CD36-1G04-hIgG1-LALA抗体在小鼠和人中交叉识别。B-hCD36 MC38蛋白表达分析通过流式细胞术对B-hCD36 MC38细胞中的CD36表达进行分析。用种属特异性抗 CD36抗体对B-hCD36 MC38培养物的单细胞混悬液进行染色。在B-hCD36 MC38细胞表面检测到人CD36，但在野生型MC38细胞表面未检测到。使用B-hCD36 MC38细胞的10-G12克隆进行体内实验。肿瘤生长曲线和体重变化B-hCD36 MC38细胞的皮下同种移植肿瘤生长。将B-hCD36 MC38细胞(5x105)和野生型MC38细胞(5x105)皮下植入B-hCD36小鼠（雌性，7周龄，n=5）。每周测量两次肿瘤体积和体重。(A)平均肿瘤体积±SEM。(B)体重（平均值±SEM）。体积以mm3表示，使用公式：V=0.5X长径X短径2。如图A所示，B-hCD36 MC38细胞能够在体内建立肿瘤，可用于有效性研究。肿瘤细胞蛋白表达分析将B-hCD36 MC38细胞皮下移植到B-hCD36小鼠（n=5）中，接种后35天，收获肿瘤细胞并通过流式细胞术评估人CD36表达。如图所示，人CD36在肿瘤细胞表面高度表达。因此，B-hCD36 MC38细胞可用于新型CD36疗法的体内药效研究。更多验证数据信息，正在研究进行中，敬请关注。想要获取更多百奥动物自主研发的人源化小鼠信息，请访问百奥动物官网或扫描下方二维码。参考文献1.CD36-mediated ferroptosis dampens intratumoral CD8+T cell effector function and impairs their antitumor ability2.Wang, H., Franco, F., Tsui, Y. et al. CD36-mediated metabolic adaptation supports regulatory T cell survival and function in tumors. Nat Immunol 21, 298–308 (2020). doi：10.1038/s41590-019-0589-53.Wang, Jingchun; Li, Yongsheng (2019). CD36 tango in cancer: signaling pathways and functions. Theranostics, 9(17), 4893–4908. doi:10.7150/thno.36037 

自身免疫性疾病，是机体免疫系统出现异常，自身抗体或自身效应淋巴细胞攻击正常细胞导致的自身组织器官损伤性疾病。自身免疫性疾病有100多种，位于心血管疾病和肿瘤之后的第三类主要疾病。B细胞作为自身免疫性疾病最重要的效应细胞之一，靶向B细胞相关靶点药物的开发是各大药企热衷的治疗领域之一。BAFF靶点介绍B细胞激活因子BAFF（也称为TNFSF13B、CD257）作为一种关键的B细胞生存因子，属于肿瘤坏死因子（TNF）配体家族成员，有可溶型和膜结合型两种形式。BAFF在包括单核细胞、树突细胞和骨髓基质细胞在内的各种细胞类型上均有表达，其受体有3种：TNFRSF13B/TACI（跨膜激活因子和钙调节因子、亲环蛋白配体作用因子）， TNFRSF17/BCMA（B细胞成熟抗原），TNFRSF13C/BAFFR（B细胞激活因子受体）。BAFF通过与其受体的结合在支持B细胞的存活和增殖、调节类别转换重组以及自身免疫性B细胞的选择等方面发挥关键作用；此外，有研究发现BAFF也能促进T细胞的活化、增殖和分化。图1. BAFF与其受体的互作[1]BAFF参与了人类许多自身免疫性疾病的发病机制，在系统性红斑狼疮(SLE)、多发性硬化症（MS）、IgA肾病、Sjögren’s综合征和类风湿关节炎等患者的血清中检测到BAFF的浓度水平升高。其中，系统性红斑狼疮（SLE）是一种临床表现为多系统损害症状的慢性系统性自身免疫疾病，它的发病机制复杂，包括自身反应性T细胞与B细胞的增殖活化，多种自身致病性抗体的产生，细胞因子分泌及其受体表达异常等。目前，用于治疗SLE的上市药物只有两种，分别是贝利尤单抗（Belimumab）和泰它西普（Telitacicept）。图2. 系统性红斑狼疮的免疫发病机制（注：BAFF又称为BLyS）[2]贝利尤单抗贝利尤单抗（Belimumab，商品名：倍力腾）是一种特异性识别和抑制BAFF生物活性的人源性单克隆抗体，能显著降低循环B细胞水平。B细胞耐受性的丧失在SLE的发生和维持中起着关键的病理作用，靶向B细胞的产生、相互作用和功能性治疗被认为是一种有前途的新策略。贝利尤单抗是当前唯一同时获得FDA和CDE批准的新药。12000年10月，HGS和Cambridge Antibody Technology(CAT)达成合作，共同开发针对BLyS的单克隆抗体。最终在2003年得到了以高亲和力结合BLyS的人源单抗“LymphoStat B”，即后来的Belimumab。22006年8月，HGS和GlaxoSmithKline（GSK）达成了一项共同开发和商业化Belimumab的协议。根据协议，GSK协助HGS进行Belimumab的临床试验，两家公司平分临床试验的成本及之后产品销售获得的利润。32019年7月，贝利尤单抗在中国获批上市，全球首个且目前唯一治疗SLE的生物制剂Belimumab在华获批，开启了SLE临床治疗的新篇章。 42020年12月，贝利尤单抗正式获得国家药品监督管理局批准，通过谈判纳入了2020版国家医保目录，用于治疗儿童SLE，意味着贝利尤单抗成为中国覆盖5岁及以上儿童及成人SLE治疗的生物制剂。图3. 贝利尤单抗产品图（来源于百度图片搜索）泰它西普泰它西普（Telitacicept，商品名：泰爱）是一种TACI-Fc融合蛋白，由人跨膜激活剂及钙调亲环素配体相互作用因子（TACI）受体的胞外域以及人免疫球蛋白G（IgG）的可结晶片段（Fc）域构成。泰它西普靶向两类对B淋巴细胞发育至关重要的细胞信号分子：B淋巴细胞刺激因子（BLyS）和增殖诱导配体（APRIL），能够有效降低B细胞介导的自身免疫应答，达到治疗自身免疫疾病的目的。泰它西普目前仅被CDE批准用于治疗8分以上的SLE患者。12010年荣昌生物向国家药监局申报临床试验，并于2011年获得I期临床试验批件。22012年在北京协和医院完成I期临床试验，2013年获国家食品药品监督管理总局Ⅱ、Ⅲ期临床试验批件。32019年11月，泰它西普的新药上市申请正式获得CDE承办受理，并于12月以具有明显治疗优势创新药纳入优先审评审批。42021年3月，泰它西普正式获得国家药品监督管理局（NMPA）批准上市，用于治疗SLE，标志着荣昌生物迎来了首个正式进入商业化阶段的产品。图4. 泰它西普产品及结构图（来源于荣昌生物官网）根据科睿唯安数据库检索发现，除了以上两种上市药物以外，还有多款相关药物处在临床研究阶段。表1.药物研究进展（部分）BioMice百奥动物自主开发了人源化B-hBAFF mice、B-hBAFFR mice 助力药物研发。B-hBAFF mice基本信息蛋白表达分析用ELISA方法对野生型(WT)小鼠和B-hBAFF小鼠进行BAFF种特异性表达分析。采集WT小鼠(+/+)和杂合子B-hBAFF小鼠(H/+)的血清，用种特异性BAFF ELISA试剂盒进行ELISA分析。小鼠BAFF在WT小鼠和杂合B-hBAFF小鼠中均可检测到，人BAFF在杂合B-hBAFF小鼠中可检测到。B-hBAFFR mice基本信息蛋白表达分析流式细胞术分析B-hBAFFR纯合小鼠中种特异性BAFFR的表达情况。分别取WT小鼠(+/+)和纯合B-hBAFFR小鼠 (H/H)的脾细胞，用种特异性抗BAFFR抗体进行流式细胞术分析。小鼠BAFFR在WT小鼠中检测到，人BAFFR只在纯合B-hBAFFR中能检测到，WT小鼠中无法检测到。更多验证数据信息，正在开展中，敬请关注。参考资料[1]. Samy E ,  Wax S ,  Huard B , et al. Targeting BAFF and APRIL in systemic lupus erythematosus and other antibody-associated diseases[J]. International Reviews of Immunology, 2017.[2]. Espinosa G ,  Cervera R . Belimumab: a BLyS-specific inhibitor for the treatment of systemic lupus erythematosus.[J]. Clinical Pharmacology & Therapeutics, 2012, 91(12):143.[3]. https://www.gsk.com/en-gb/search/?q=belimumab&p=5.[4]. http://www.remegen.cn/index.php?v=show&cid=68&id=113.

炎症性肠炎( Inflammatory Bowel Disease, IBD)是一种病因不明的结肠或胃肠道的非特异性慢性炎症性疾病。因为其易复发，不可根治，曾被称为“绿色癌症”，和普通肠炎有较大区别。普通肠炎一般是急性的，进行抗感染治疗后可以治愈。IBD临床表现IBD 可产生多种临床表现，包括但不限于以下几种：➤ 消化道症状如腹泻、腹痛、便血、肛周脓肿等；➤ 全身症状如体重减轻、发热、乏力、贫血等；➤ 肠外表现如关节、皮肤、粘膜、眼部病变等；严重者可出现肠穿孔、肠梗阻、大出血等，甚至癌变。IBD发病机制IBD发病原因目前尚未明确，研究表明：易感基因、免疫系统、外界环境和肠道微生物等多种因素均与疾病发生相关。IBD发病因素其中环境触发因素可通过其对微生物组的影响来介导IBD发病机制。然而，为了使微生物改变导致不适当的和持续的炎症，肠屏障的分离腔和粘膜完整性也受到损害。在IBD粘膜中效应T细胞和调节性T细胞（T-reg）之间的平衡受到了干扰，造成异常的免疫应答和T细胞驱动的过度炎症反应。正常肠和炎症性肠病(IBD)的肠黏膜IBD包括溃疡性结肠炎（ulcerative colitis，UC）和克罗恩病（Crohn’s disease，CD），两者最大的区别是：UC 的炎症只局限于大肠，而 CD 的炎症可以发生于全消化道从口腔到肛门部。IBD以前在我国属于少见病，但近年来，其发病率逐渐攀升。IBD疾病模型目前有多种临床前小鼠模型用于研究 IBD，基于不同诱导方法得到的疾病模型具有特定的用途。葡聚糖硫酸钠（Dextran Sulfate Sodium Salt，DSS）诱导的小鼠肠炎模型是使用最广泛的化学诱导小鼠 IBD 模型。通过将 DSS 溶于饮用水中诱发急性溃疡性肠炎或者慢性结肠炎，破坏小鼠肠上皮细胞，非特异性免疫细胞释放细胞因子，最终导致黏膜屏障的完整性遭到破坏，动物表现出明显的体重减轻、稀便、便血以及粒细胞浸润现象，在临床症状和病理特征上与人类的溃疡性结肠炎极其相似。百奥赛图在 C57BL/6 小鼠上建立了稳定的 DSS 诱导 IBD 疾病模型，可用于炎症性肠炎的临床前研究和药效评价。IBD 小鼠疾病模型用于评价炎症性肠炎药物环孢菌素 A（Cyclosporin A, CsA）的药效模型制备示意图临床评分C57BL/6 小鼠连续 7 天饮用含 DSS 的饮用水，全程记录体重变化，并进行临床评分。（A-C）各组动物体重变化趋势。（D）各组动物临床评分。实验数据显示，造模组（G2-DSS）相对于未造模组（G1-Vehicle），动物体重有所下降，且临床评分明显升高；给药组（G3-DSS-CSA low dose 和 G4-DSS-CSA high dose）的动物体重变化不明显，临床评分略有升高。这表明 DSS 诱发 C57BL/6 小鼠炎性肠病疾病模型造模成功，CsA 对小鼠炎性肠病疾病模型的临床症状有缓解，并且呈现剂量依赖效应大体取材与结肠评价DSS 诱发 C57BL/6 小鼠炎性肠病疾病模型 7 天后，取结肠进行称重和测量长度。（A）结肠长度比较。（B）各组动物结肠重量与体重比值。（C）各组动物结肠重量与结肠长度比值。实验数据显示，造模组（G2-DSS）相对于未造模组（G1-Vehicle），结肠重量和长度明显异常；与造模组相比，给药组的结肠重量下降，结肠长度上升，二者比值显著降低。这表明 CsA 对 DSS 诱发小鼠炎性肠病疾病模型的结肠症状有所缓解。病理分析取 DSS 诱发 C57BL/6 小鼠炎性肠病疾病模型的结肠，将组织切片进行病理检测。（A）各组动物结肠 H&E染色图示。（B）各组动物结肠病理评分。实验数据显示，造模组（G2-DSS）相对于未造模组（G1-Vehicle），肠上皮细胞受到破坏，肠道黏膜层完整性遭到破坏，炎性细胞大量浸润；而给药组（G3-DSS-CSA low dose 和 G4-DSS-CSA high dose）的结肠症状明显缓解，且表现出剂量效应。综合临床评分、大体取材和结肠评价、病理分析结果，表明 DSS 诱发 C57BL/6 小鼠炎性肠病疾病模型造模成功，环孢菌素 A（CsA）能够显著缓解 DSS 诱发炎性肠病结肠病损，且表现出剂量效应。可提供服务内容IBD药物评估相关模型列表百奥动物自主研发多种自身免疫性疾病模型，可点联系我们，获取更多疾病模型资料。参考资料：1. Elson, C.O., Sartor, R.B., Tennyson, G.S. & Riddell, R.H. Experimental models ofinflammatory bowel disease. Gastroenterology 109, 1344-1367 (1995). 2. Kiesler, P., Fuss, I.J. & Strober, W. Experimental Models of Inflammatory Bowel Diseases. Cell Mol Gastroenterol Hepatol 1, 154-170 (2015). 3. Mourad, F.H., Yau, Y., Wasinger, V.C. & Leong, R.W. Proteomics in Inflammatory Bowel Disease: Approach Using Animal Models. Dig Dis Sci 62, 2266-2276 (2017).4. Guilherme Piovezani Ramos, MD, and Konstantinos A. Papadakis, MD.Mechanisms of Disease: Inflammatory Bowel Diseases.Mayo Clin Proc. 2019;94(1):155-165.

自然杀伤（NK）细胞源于骨髓造血干细胞，主要分布于骨髓、外周血、肝、脾、肺和淋巴结。属于先天免疫系统的核心细胞，它们在免疫监视中扮演着非常重要的角色，随着对NK细胞的分子特征和功能的进一步探索，开发以NK细胞为基础的靶向免疫治疗可能引发肿瘤免疫治疗的新突破。图1. NK细胞在癌症中的作用机制[1]虽然近年来基于T细胞免疫检查点，如PD-1/PD-L1和CTLA-4在临床抗肿瘤取得了较大的进展，但免疫治疗并不能对所有患者起到良好效果，目前的很多研究也表明T细胞免疫疗法具有一定的局限性。NK细胞作为重要的天然免疫细胞之一，表达多种激活受体，包括CD16、NKG2D、SLAM家族成员和自然细胞毒性受体NKp30、NKp44和NKp46。NK细胞不需预先致敏就可以杀伤靶细胞，在抗肿瘤、抗病毒感染和免疫调节等方面具有重要作用，是抗癌效果良好的一种免疫细胞。因此目前基于NK细胞的肿瘤免疫疗法逐渐受到关注，如通过单克隆抗体靶向NK细胞免疫检查点治疗。针对NK细胞免疫检查点机制研究和新药开发的需求，BioMice 百奥动物自主研发了相关的实验动物模型。NK细胞免疫检查点01、NKp46NKp46自然细胞毒性激动型受体（NCR）家族中的一员，NCR受体家族的另外两个成员是NKp30和NKp44，与其他两个成员只表达在人NK细胞上不同，NKp46同时表达在人和小鼠的NK细胞上。NKp46主要表达在NK细胞上，也表达在一些亚型T细胞和ILCs上。NKp46配体和信号机制目前还不清楚，目前在研疗法有10项，有抗体药物和细胞疗法，抗体药物有单抗，双抗及多抗，开发机构有大学和Innate Pharma等企业。据文献报道，NK细胞衔接器可同时靶向肿瘤抗原，NKp46和CD16的多功能抗体。目前的药物都处于早期生物测试研发阶段和临床前阶段。图2. 多功能NK细胞衔接器[2]B-hNKP46 mice基本信息：蛋白表达分析：图3. 流式细胞术分析 B-hNKp46纯合小鼠NKp46的表达通过流式细胞术分析野生型C57BL/6和B-hNKp46纯合小鼠中NKP46的特异性表达。收集野生型C57BL/6和纯合B-hNKP46小鼠的脾细胞，结果显示：用属种特异性NKP46抗体进行流式细胞术分析。在野生型C57BL/6小鼠细胞表面检测到mNKP46，在B-hNKP46纯合小鼠的NK细胞表面检测到hNKP46。02、NKG2ANKG2家族是NK细胞上的一类重要受体，包括NKG2A，NKG2B，NKG2C，NKG2D，NKG2E，NKG2F，NKG2H等成员。NKG2A是NKG2家族中的抑制性成员，NKG2A主要表达在NK细胞表面和部分T细胞（CD8+T细胞、Th2细胞以及NKT细胞）。NKG2A可与CD94形成异源二聚体，与其配体结合后，激活细胞内的抑制性信号通路，抑制NK细胞活性，从而使肿瘤避免被NK细胞杀伤。因此NKG2A抗体可以阻断这一抑制信号，释放NK细胞，起到抗肿瘤的作用。HLA-E是NKG2A的天然配体。HLA-E广泛在所有组织细胞中表达，但表达水平较低，而其在癌细胞中被上调。研究发现, 多种肿瘤细胞高表达HLA-E, 且肿瘤浸润处的NK和CD8+T细胞高表达NKG2A[3],  使肿瘤细胞逃避NK和CD8+T细胞的免疫识别。图4. 肿瘤细胞表面高表达HLA-E进行免疫逃逸[4]B-hNKG2A mice基本信息：NK细胞蛋白表达分析：图5. 流式细胞术分析B-hNKG2A杂合小鼠NKG2A的表达通过流式细胞术分析野生型C57BL/6和B-hNKG2A杂合小鼠中NKG2A蛋白的表达。收集野生型C57BL/6和B-hNKG2A杂合小鼠的脾细胞，用种属特异性抗NKG2A抗体进行流式细胞术分析。结果显示：在C57BL/6小鼠和B-hNKG2A杂合鼠的NK细胞表面检测到mNKG2A，在B-hNKG2A杂合鼠的NK细胞表面检测到hNKG2A。（其中，用来检测human NKG2A的抗体是内部制备的monalizumab）除了NKG2A单人源化小鼠，我们还开发了CD94/NKG2A双人源化小鼠，成为验证CD94/NKG2A靶点药物的有力工具。B-hCD94/hNKG2A mice基本信息：体内药效：                                                                    图6.B-hCD94/hNKG2A小鼠药效验证抗人NKG2A抗体Monalizumab（来源合作方）联合PD-L1抗体Tecentriq（来源合作方）在B-hCD94/hNKG2A小鼠中的抗肿瘤药效。（A）纯合B-hCD94/hNKG2A小鼠 (雌性，6-7周龄，n=6) 皮下接种小鼠结肠癌MC38细胞系。当肿瘤体积达到约100 mm3时，将小鼠分组，分组后给与抗人NKG2A和PD-L1抗体进行治疗，结果显示抗人NKG2A和PD-L1抗体能够显著抑制MC38肿瘤细胞的生长。（B） 治疗期间体重变化。如A图所示，抗人NKG2A抗体和PD-L1抗体在B-hCD94/hNKG2A小鼠体内能够有效控制肿瘤生长，表明B-hCD94/hNKG2A小鼠为PD-L1和NKG2A抗体联合治疗的体内评价提供了一个强大的临床前模型。03NKG2DNKG2D为活化性受体，在NK细胞活化过程中起着非常重要的作用。人NKG2D主要表达于NK细胞、CD8+T细胞、γδT细胞以及一些自体反应的CD4+T细胞，发挥着清除损伤、病原体感染等细胞的生理功能，在抗肿瘤免疫应答过程中也发挥着重要作用。NKG2D不与CD94结合，其配体在人类是MICA、MICB和ULBP1，鼠中为Rae-1、H60和MULT1。正常情况下，这些配体表达在细胞表面，与NKG2D结合后可促进其下游的激活通路。这些配体在正常细胞中受到严格调节，而在肿瘤细胞等受损细胞上高表达，与NKG2D结合后直接活化或作为共刺激分子激活效应细胞，发挥免疫监视作用。图7. NKG2D受体及其配体[5]B-hNKG2D mice基本信息：NK细胞蛋白表达分析：图8. 流式细胞术分析B-hNKG2D纯合小鼠NKG2D的表达通过流式细胞术分析野生型C57BL/6和B-hNKG2D纯合小鼠中NKG2D蛋白的表达。收集野生型C57BL/6和纯合B-hNKG2D小鼠的脾细胞，用种属特异性抗NKG2D抗体进行流式细胞术分析。结果显示，在C57BL/6小鼠NK细胞表面检测到mNKG2D。在B-hNKG2D纯合小鼠的NK细胞表面检测到hNKG2D。04、CD16ACD16A主要表达在NK细胞、巨噬细胞和单核细胞表面，胞内有两条免疫受体酪氨酸激活基序（ITAM），和抗原抗体复合物结合后，激活下游信号，从而促进抗体介导的细胞毒性（ADCC）。NK细胞不需要特异性的抗原刺激就可以发挥ADCC作用。在没有共刺激信号的情况下，未致敏的人NK细胞只能通过CD16A触发细胞毒活性[6]。CD16A的在研药物主要是针对肿瘤抗原的抗体药物，通过Fc改造提高对CD16A的亲和力或针对CD16A的双特异性抗体。B-hCD16A mice基本信息：NK细胞蛋白表达分析：图9. 流式细胞术分析B-hCD16A纯合小鼠CD16A的表达用流式细胞术分析野生型C57BL/6小鼠和纯合B-hCD16A小鼠中CD16A的表达。收集野生型C57BL/6小鼠和纯合B-hCD16A小鼠的脾细胞。结果显示，人的CD16A只能在纯合B-hCD16A小鼠的NK细胞中只能检测到，野生型C57BL/6小鼠中未检测到。图10. 流式细胞术分析B-hCD16A纯合小鼠PBMC水平用流式细胞术分析结果显示，人源化小鼠NK细胞hCD16A表达水平与人PBMC相似。以及我们还开发了CB-17 SCID背景的人源化小鼠。B-hCD16A（CB-17SCID） mice基本信息：NK细胞蛋白表达分析：图11. 流式细胞术分析B-hFCGR3A(CB-17 SCID)纯合小鼠FCGR3A的表达用流式细胞术分析野生型CB-17 SCID小鼠和纯合B-hFCGR3A(CB-17 SCID)小鼠中FCGR3A的表达。收集野生型CB-17 SCID小鼠和纯合B-hFCGR3A(CB-17 SCID)小鼠的脾细胞。结果显示，人的FCGR3A只能在纯合B-hFCGR3A小鼠的NK细胞中只能检测到，野生型CB-17 SCID小鼠中未检测到。展望NK细胞因为有着不受MHC限制的细胞毒性、可以产生细胞因子和免疫记忆等功能，从而具有独特的抗肿瘤效应，使其成为先天性和适应性免疫反应系统中的关键角色。T细胞免疫检查点疗法已经在临床肿瘤治疗上，显示出巨大临床转化潜力，相信随着NK细胞免疫检查点这支“潜力股”疗法的加入，未来肿瘤免疫疗法的适用范围可以得到更好的拓展。参考文献[1]Feixue Wang, Jennie Ka Ching Lau & Jun Yu. The role of natural killer cell in gastrointestinal cancer: killer or helper.Cell. 2021;40:717–730.[2]Laurent Gauthier, Ariane Morel, Nadia Anceriz. Multifunctional Natural Killer Cell Engagers Targeting NKp46 Trigger Protective Tumor Immunity. Cell. 2019;177(7):1701-1713.[3] Algarra I , A García-Lora, Cabrera T , et al. The selection of tumor variants with altered expression of classical and nonclassical MHC class I molecules: implications for tumor immune escape.[J]. Cancer Immunology Immunotherapy, 2004, 53(10):904-910.[4]Montfoort N V ,  Borst L ,  Korrer M J , et al. NKG2A Blockade Potentiates CD8T Cell Immunity Induced by Cancer Vaccines - ScienceDirect[J]. Cell, 2018.[5]Mercedes, B . F., Carolina, I . D., Norberto, W . Z.  Leveraging NKG2D Ligands in Immuno-Oncology.Immunol., 29 July 2021[6] Bryceson,  Y . T.,March, M . E.,Ljunggren, H . G. & Long, E. O. Synergy among receptors on resting NK cells for the activation of natural cytotoxicity and cytokine secretion. Blood 107, 159-166, doi:10.1182/blood-2005-0401351(2006).

随着人口老龄化的加深，中枢神经系统退行性疾病已变成现代社会严重的医学问题。目前，大量研究表明多种中枢神经系统（CNS）疾病，例如帕金森病、阿尔兹海默症、脑肿瘤和多发性硬化等疾病的发生、发展与治疗，都与血脑屏障（blood brain barrier, BBB）关系密切。      如今，虽然抗体类药物凭借其靶向的高度特异性已经在多种疾病的治疗中获得成功，但在CNS相关疾病的治疗中却遇到了瓶颈，实现跨血脑屏障进行药物递送成为一重大挑战。如何在维持血脑屏障结构功能完整性的前提下提高药物递送效率，改善相关疾病的治疗，是今后研究CNS相关疾病的重要方向。血脑屏障的结构与功能1913年，Goldman 直接将染料注射进了动物的蛛网膜下腔，得到了脑组织着色，其他部分不着色的结果，此结果在1900年 Lewandowsky 正式提出了血脑屏障这一概念的基础上进一步证实了其存在。血脑屏障（BBB）是一种大脑血管、细胞以及其它组成大脑组织之间的保护性屏障，主要由周细胞、脑毛细管内皮细胞、基膜、星形胶质细胞足突和脑血管内皮细胞间的紧密连接组成，能为大脑提供一种防御机制来抵御血液中的外来病原体和毒素等（图1）。BBB通过严格控制特定营养物质，以及限制有害异生物质分子的通过，来维持CNS 稳态；但另一方面在开发CNS生物药时，由于BBB的存在，导致生物药在大脑中的含量仅相当于血浆的 0.01-0.1%，为实现跨血脑屏障进行药物递送带来了巨大的难度。图1. 血脑屏障示意图[1]脑部药物递送手段--受体介导的胞吞作用（RMT）大脑中生物药物递送技术包括侵入式和非侵入式技术，利用非侵入式技术跨BBB主要是利用内源性胞吞的过程，例如吸附介导的胞吞作用, 载体介导的胞吞作用（CMT）和受体介导的胞吞作用（RMT）（图2）。在这些过程中，RMT 已成为BBB递送研究最广泛的过程。图2. 穿越BBB的生物转运机制[1]为了通过RMT过程达到最优的治疗药物递送效率，靶受体蛋白应在脑血管的内皮细胞中高表达，同时在外周血管中最低限度表达。遵循这一思路，过去几十年大多数研究都集中于已知在血脑屏障细胞上高表达的靶点，例如转铁蛋白受体（TFR），胰岛素受体（IGF1R），CD98重链（CD98HC）等，针对这些靶点正在进行的药物临床试验（图3）将表明基于RMT的技术是否可安全有效地将治疗相关药物剂量递送至CNS，同时将外周和/或脱靶毒性作用降至最低。 图3. 部分基于RMT进行的临床研究[1]转铁蛋白受体（TFR1）转铁蛋白（TF）结合铁是通过与其受体，即 Transferrin Receptor 1（TFR1）相互作用而实现的。TF 与 Fe3+相互作用形成全铁 -TF，并与 TFR1 受体结合，在细胞内吞作用下进入核内体。在偏酸性核内体的环境中，Fe3+  与Tf分离，同时STEAP3将 Fe3+ 还原为 Fe2+ ，并被二价金属离子转运蛋白1（DMT1）转运到细胞质中，然后释放了Fe3+ 的TF与TFR1组成 TF/TFR1 复合物，通过胞吐作用回游到细胞表面。在细胞表面，转铁蛋白（TF）与受体TFR1分离，成为脱铁 -TF，然后再与Fe3+重新结合参与铁循环。整个过程完成后TF和TFR1被循环利用，进入细胞摄取铁的下一个周期中。图4. 转铁蛋白循环机制[2]转铁蛋白受体（TFR1）是用于基于RMT的大脑递送方法中研究最广泛的靶蛋白，TFR1在血脑屏障上高表达，识别携带铁的转铁蛋白将其转运到细胞内，从而介导铁的脑内转运。多项研究证明能够使用转铁蛋白或者 TFR1为靶点来转运药物到脑内，并在动物模型中得到验证。针对TFR1靶点机制研究和新药开发的需求，BioMice 百奥动物自主研发的 B-hTFR1 mice 是评估蛋白治疗药物对CNS的有效递送的优质临床前实验动物模型。B-hTFR1 mice 验证数据红细胞蛋白表达分析流式细胞术分析纯合B-hTFR1小鼠中TFR1表达采集野生型小鼠和纯合 B-hTFR1小鼠的骨髓，采用种特异性抗TFR1抗体进行流式分析。小鼠TFR1在野生型小鼠中检测到。人TFR1仅在纯合B-hTFR1小鼠中检测到，而在野生型小鼠中检测不到。TFR1抗体的体内PK评价抗人TFR1双特异性抗体(BsAbs)的体内药代动力学(PK)评价如图所示，抗人TFR1 BsAbs在剂量后表现出更高的血清清除率和增强的脑暴露。研究结果证实，B-hTFR1小鼠的大脑能够摄取静脉注射的抗人TFR1 BsAbs。平均值±SEM。  溶质载体转运蛋白 -CD98 重链（CD98HC）溶质载体转运蛋白：CD98HC在小鼠大脑毛细血管和微血管中高度富集，并且位于脑内皮细胞的管腔和离腔表面。最近使用能够识别CD98HC和 β‑分泌酶 1（BACE1）的双特异性抗体进行的一项研究表明，将这些抗体静脉注射到小鼠体内可实现药物的大脑递送，并伴随着Aβ产生显着减少。CD98HC/BACE1双特异性抗体在大脑递送中的效率比TfR/BACE1双特异性抗体高 80‑90%，表明靶向CD98HC可能更有效[3]。针对CD98HC靶点，BioMice 百奥动物自主研发的B-hCD98HC mice助力CNS相关疾病的临床前药物评价。B-hCD98HC mice 验证数据蛋白表达分析流式细胞术分析 B-hCD98HC 纯合小鼠 CD98 的表达取野生型小鼠和纯合 B-hCD98HC小鼠脾细胞，用种特异性抗CD98抗体进行流式细胞术分析。野生型小鼠中检测到小鼠CD98。人CD98在 B-hCD98HC纯合小鼠中检测到，而在野生型小鼠中未检出。胰岛素样生长因子 1 受体（IGF1R）胰岛素样生长因子 1 受体（IGF1R）在大脑和脑血管中表达。因此，不干扰IGF1结合的抗体与IGF1R的结合可能是在BBB中提供生物治疗剂的一种有前景的策略。在最近的一项研究中，产生了针对IGF1R且远离IGF1结合位点的结构域的新型骆驼单域抗体（VhHs），体外模型中显示与非靶向VhH相比，大鼠的脑和脑脊液暴露量更高。BioMice 百奥动物针对IGF1R靶点机制研究自主研发的B-hIGF1R mice，是评估蛋白治疗药物对CNS的有效递送的优质临床前实验动物模型。除以上部分受体介导的胞吞作用外，越来越多的技术已经开始被用于探索增强生物类药物递送到脑部，如外泌体技术，基于腺相关病毒（AAV）的基因递送技术等。随着研究的深入，打破血脑屏障，攻克脑部药物递送的难题指日可待！参考资料：[1]Terstappen, G.C., Meyer, A.H., Bell, R.D. et al. Strategies for delivering therapeutics across the blood–brain barrier. Nat Rev Drug Discov 20, 362–383 (2021). https://doi.org/10.1038/s41573-021-00139-y[2] Li H ,  Sun H ,  Qian Z . The role of the transferrin-transferrin-receptor system in drug delivery and targeting.[J]. Trends in Pharmacological ences, 2002, 23(5):206-209.[3] https://mp.weixin.qq.com/s/5AW3VfVa_xQzHeAVDVPU7A百奥动物立足全球生物医药行业，从技术创新出发，百奥赛图建立“BioMice百奥动物”子品牌。百奥动物集创新动物模型研发制备、生产供应和实验服务为一体，拥有2500余个独特基因编辑动物/细胞系模型，覆盖肿瘤，自免，代谢等多个疾病领域，包括重度免疫缺陷B-NDG及系列小鼠、靶点人源化小鼠和全人抗体RenMice三大系列产品，结合优质的药理药效评价服务，以高标准的3大动物中心为支撑，极大的满足了全球科学研究和药物开发需求。创新的动物模型、高标准的质量管理、多元化的服务平台，助推生物医药创新产业的快速发展。

乙型（HBV）、丙型（HCV）肝炎病毒和非酒精性脂肪性肝病（non-alcoholic fatty liver disease, NAFLD），是引起肝硬化（cirrhosis）和肝癌（hepatocellular carcinoma, HCC）的主要驱动因素。近些年，广泛的HBV疫苗接种和针对HBC、HCV的高效抗病毒治疗手段的开发使得乙肝和丙肝有所好转。但世界范围内，肥胖症和2型糖尿病越来越流行，使得NAFLD及其进展性疾病非酒精性脂肪性肝炎（non-alcoholic steatohepatitis, NASH）的患病率成比例上升，并逐步取代病毒性肝炎，成为全球肝硬化和肝癌的发病率和死亡率上升的主要驱动因素。流行病学显示，NAFLD在一般人群中的患病率约为25％，全球NASH患病率则在1.5%-6.5%之间[1]。NASH好发于中年男性，特别是超重肥胖或患有2型糖尿病的个体。同时NASH患者常常并发肥胖、糖尿病和心血管疾病等。因为这种疾病症状雷同于酒精性脂肪肝炎，但患者无酗酒史，故将其命名为非酒精性脂肪性肝炎（NASH）。从病理角度，NASH最早起源于肝细胞中增加的脂肪合成，机体摄入的葡萄糖和游离脂肪酸是脂肪合成的原料。脂肪过载的肝细胞容易出现应激反应（stress），包括内质网应激、线粒体受损、氧化应激（活性氧ROS的产生）和脂毒性等，出现肝细胞损伤和炎症反应，进一步有可能恶化成肝硬化甚至是肝癌（图1）。图1. NAFLD演变成NASH的过程以及NASH的病理特征[2]对应的，治疗NASH的方法主要是抗脂肪化（减脂减重），抗炎和抗纤维化[3]。可以联合应用作用机制不同的药物进行治疗。目前用于NASH治疗的药物主要包括[4]:❶ 法尼酯X受体（FXR）激动剂，如奥贝胆酸（Obeticholic acid , OCA）（Intercept公司）, Tropifexor和 Cilofexor；❷ 成纤维细胞生长因子（FGF）变体：Efruxifermin, Aalafermin；❸过氧化物酶体增殖物激活受体（PPAR）激动剂：Elafibranor, Lanifibranor；成纤维细胞生长因子（FGF）变体：Efruxifermin, Aalafermin；❹ 胰高血糖素样肽-1（GLP-1）激动剂：Semaglutide；❺ C-C基序趋化因子受体（CCR2/5）抑制剂：Cenicriviroc（CVC）等。尽管关于NASH发病机制的研究已取得了大量进展，但在关键3期临床研究中，奥贝胆酸是唯一一种具有显著疗效的药物。至今仍没有欧美药监局获批的NASH治疗药物。通过改变饮食、增强锻炼甚至是手术来减肥仍然是改善NASH的主要方式。未来十年，NAFLD治疗领域仍需深耕。对疾病机制的深入研究、评估新药药效等都离不开疾病动物模型。目前NASH疾病动物模型主要可以分为3类：饮食诱导、化学诱导和基因编辑动物模型。在这三种方法的基础上，也可以进行组合应用。今天，我们就来着重介绍百奥动物已经建立的3种NASH疾病模型。NASH小鼠模型西方饮食（western diet, WD）诱导的NASH小鼠模型用西方饮食饲料，也就是高糖、高脂，高胆固醇配方的饲料诱导小鼠造模，可以看到明显的体重增加，血糖的升高，糖耐受能力的受损，以及肝脏转氨酶的升高，和血脂的升高。图2. 西方饮食诱导的NASH小鼠模型。(A) NASH模型建立：喂养标准饮食（standard diet, STD）或WD（含有21%的脂肪，50%的碳水化合物和1.5%的胆固醇）给8周龄C57BL/6雄性小鼠共22周；与STD相比，WD组小鼠（B）体重升高；（C）饥饿血糖升高；（D, E）葡萄糖耐受受损；（F）肝重上升；（G）肝重体重比；（H）血清谷丙转氨酶（ALT）水平升高；（I）血胆固醇升高；（J）肝脂肪变H&E染色示例；（K）NAS（NAFLD acticity score）评分升高。Data are means ±SEM; n=8-9 mice/group. *P <0.05, **P <0.01, ***P <0.001.高脂肪蛋氨酸胆碱缺乏饮食（high fat methionine-choline deficient diet, HFMCD）诱导的NASH小鼠模型HFMCD成分中含有60 kcal%脂肪，蛋氨酸、胆碱缺乏，该饮食诱导的NASH模型显示出肝损伤、肝脂肪变性和纤维化增加，伴随NAS评分增加。图3. HFMCD诱导的NASH模型。(A) NASH模型建立：喂养标准饮食（standard diet, STD）或HFMCD给8周龄C57BL/6雄性小鼠共4-6周；与STD相比，HFMCD组小鼠（B）体重无显著差异；（C, D）肝重和肝重体重比上升；（E, F）谷丙转氨酶（ALT）和谷草转氨酶（AST）水平升高；（G）肝脂肪变和炎症H&E染色示例及（H）NAS（NAFLD acticity score）评分升高；（I）肝纤维化天狼星红染色示例及（J）统计分析。*P <0.05, ***P <0.001, ****P <0.0001.药效学研究表明，雷公藤红素（celastrol）可以减轻HFMCD引发的NASH。图4. 雷公藤红素（celastrol）可以减轻MCD引发的NASH。（A）H&E染色示例雷公藤红素处理后肝脂肪变和炎症减少；（B）ALT，AST，NAS评分在雷公藤红素治疗后均有好转。四氯化碳(CCl4)诱导的NASH小鼠模型四氯化碳(CCl4)注射诱导模型，引起明显的肝脏炎症和纤维化。图5. CCl4诱导的NASH小鼠模型。(A) NASH模型建立：8周龄的雄性C57BL/6小鼠腹腔注射CCl4，浓度分别为：0.25、0.5和0.75 mL/kg，每周2次。分别诱导4周、6周和8周后进行血生化及组织学染色分析。（B）体重；（C, D）肝重和肝重体重比。图6. 对CCl4诱导的NASH小鼠模型的肝损伤相关表型分析。图7. H&E染色示例CCl4诱导后肝炎症增加。Scale bar: 50 um.图8. 天狼星红染色及其统计分析表明CCl4诱导后肝纤维化加重。图9. 天狼星红染色及其统计分析表明奥贝胆酸（Obeticholic acid , OCA）治疗后肝纤维化减轻。综上所述，三种NASH小鼠模型的特征总结如下NASH疾病模型的检测指标百奥动物能够提供的关于NASH疾病模型的检测指标包括更多信息，请访问百奥动物官网或扫描下方二维码。参考资料：[1] 诺和诺德医学资讯：https://mp.weixin.qq.com/s/bj9u_NSQOUWNgCYEi2qTsg[2] Huby, T., Gautier, E.L. Immune cell-mediated features of non-alcoholic steatohepatitis. Nat Rev Immunol (2021). https://doi.org/10.1038/s41577-021-00639-3[3] Dufour J, Caussy C, Loomba R. Combination therapy for non-alcoholic steatohepatitis: rationale, opportunities and challenges. Gut 2020; 69:1877-1884.[4] 药明康德：首款NASH疗法再度延后，患者何时才能迎来第一缕曙光？http://www.ii77.com/yangsheng/292978.html百奥动物立足全球生物医药行业，从技术创新出发，百奥赛图建立“BioMice百奥动物”子品牌。百奥动物集创新动物模型研发制备、生产供应和实验服务为一体，拥有2500余个独特基因编辑动物/细胞系模型，覆盖肿瘤，自免，代谢等多个疾病领域，包括重度免疫缺陷B-NDG及系列小鼠、靶点人源化小鼠和全人抗体RenMice三大系列产品，结合优质的药理药效评价服务，以高标准的3大动物中心为支撑，极大的满足了全球科学研究和药物开发需求。创新的动物模型、高标准的质量管理、多元化的服务平台，助推生物医药创新产业的快速发展。

随着生活水平的提高以及医疗技术的不断发展，人类预期寿命在逐步延长，这导致全球老年人口的空前增长，与此同时，与年龄相关的疾病负担也呈指数级增长[1]。有研究指出，在健康状况没有得到改善的情况下单纯延长寿命，是没有意义的[2]。基于此，世界卫生组织在2015年提出了《老龄化与健康全球战略和行动计划》，旨在实现健康老龄化的目标[3]。为了实现这一目标，需要对生物体、器官和细胞水平的衰老及疾病过程有透彻的了解，并针对衰老相关的分子途径开发预防和治疗衰老相关疾病的策略[4]。我国65岁以上人口占总人口比重及预测[5]大多数自发肿瘤、代谢性疾病以及神经退行性疾病的发病率和流行率随年龄增长而增加，其主要原因可以归咎于老年人免疫系统失调。免疫系统可以抵御病原体和杀伤癌细胞。老年人的免疫系统老化，使得免疫反应性急剧下降并且功能失调，这一现象被称为免疫衰老。研究表明，免疫治疗干预在幼小动物身上可能是有效的，但同样的治疗方法在老年动物身上却并不一定有效。考虑到大多数的癌症患者是老年人，癌症的发病率随着老龄化而增加，因此理解免疫系统失调对于免疫治疗的影响，可以更好的干预老年人的癌症治疗进程。为了最优地激发老年人的抗肿瘤免疫反应，需要识别和了解老年人免疫系统的内在缺陷，并使用自身耐受和衰老同时存在的相关模型。[6]小鼠凭借其易于饲养和处理并且寿命较短（～2.5年）的特性，成为衰老及其相关疾病研究中有吸引力的哺乳动物模式生物。[7]百奥动物提供优质老龄鼠（目前最大可提供15月龄，即60周龄的小鼠，陆续可提供最大20-22月龄小鼠），可用于衰老及其相关疾病的研究。可提供品系如下：老龄鼠百奥动物老龄鼠优势① 不同周龄小鼠现货提供；② 高标准的饲养环境；③ 非生产退役种鼠；④ 严格的遗传稳定性监测。C57BL/6J老龄鼠C57BL/6J是使用最为广泛的近交品系之一，也是第一个完成基因组测序，特征分析最全面的小鼠品系。有研究人员对C57BL/6J的生存曲线进行分析，并提供了可比较的对应的人类年龄。衰老是个连续的动态过程，大多数研究将生命阶段简单的分为成年、中年和老年。小鼠月龄和人类年龄对照关系及特点① 小鼠的3-6月龄对应成年人（20-30岁）；发育完成尚未受到衰老影响。② 小鼠的10-15月龄对应中年人（38-47岁）；可以检测到部分衰老生物标志物（非全部）的衰老变化。③ 小鼠的18-24月龄对应老年人（56-69岁）；可以检测到几乎全部衰老标志物的衰老变化[8]。老龄鼠常见表型及病理随着小鼠生长发育，外观会逐渐改变。一些常见的衰老表型有：眼周脱毛、嘴鼻部被理毛、背侧产生脱毛区及灰毛区等。C57BL/6J老龄鼠的部分正常衰老表型[9]同时随着年龄增长，与年龄相关的各项疾病也随之而来，产生一些和疾病相关的表型。例如：自发肿瘤、眼周病变、皮炎脱毛等。非近亲繁殖小鼠长期研究(2年或更长时间)的常见疾病[10]a、Findings from multiple studies are summarized for each line or group. and original terminology.b、4-way crossc、(Af _ C57BL/6)F1d、UM HET3 from (BALB/cByJ _ C57BL/6J)F1 _ (C3H/HeJ _ DBA/2J)F1 老龄鼠应用研究① 健康生命周期的基础生物学研究② 骨质、肌肉、身体组成相关研究③ 饮食、运动、认知与行为研究④ 心血管、内分泌、代谢等疾病研究⑤ 免疫学、肿瘤学、神经退行性疾病研究⑥ 年龄相关的视力、听力障碍研究百奥动物自主研发人源化小鼠模型、疾病模型、老龄鼠等上千种小鼠模型，欢迎来电咨询~参考文献：[1] Olshansky, S.J. From Lifespan to Healthspan. Jama 320, 1323-1324 (2018).[2] Rivera-Tavarez, C.E. Can We Increase Our Health Span? Physical medicine and rehabilitation clinics of North America 28, 681-692 (2017).[3] Beard, J.R. et al. The World report on ageing and health: a policy framework for healthy ageing. Lancet (London, England) 387, 2145-2154 (2016). [4] Barzilai, N., Cuervo, A.M. & Austad, S. Aging as a Biological Target for Prevention and Therapy. Jama 320, 1321-1322 (2018).[5]http://news.youth.cn/jsxw/202103/t20210310_12758403.htm[6] J. Lustgarten.Cancer, aging and immunotherapy: lessons learned from animal models.Cancer Immunol Immunother 58:1979–1989(2009) .[7] Mitchell, S.J., Scheibye-Knudsen, M., Longo, D.L. & de Cabo, R. Animal models of aging research: implications for human aging and age-related diseases. Annual review of animal biosciences 3, 283-303 (2015). [8] Flurkey, K., M. Currer, J. & Harrison, D.E. Chapter 20 - Mouse Models in Aging Research. In: Fox, J.G. et al. (eds). The Mouse in Biomedical Research (Second Edition). Academic Press: Burlington pp 637-672(2007).[9] https:// e. dxy. cn/ broadcast/ live/ id/ 22788/ ? source= wechat& sim= 1& sim_ token= jo3ALEk4m RZ9tfoghOHA rih1tV 6kp0IQvMAdhr7vws7ey9YqHi8uJxdmTk9vElaf[10] C. F. Brayton, P. M. Treuting, and J. M. Ward.Pathobiology of Aging Mice and GEM: Background Strains and Experimental Design.Veterinary Pathology 49(1) 85-105(2012).